مطالعه ریشه زایی و رشد قلمه در برخی ژنوتیپ های رز متحمل و حساس به اتیلن

نویسنده

استادیار، گروه باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران - ایران

چکیده

اتیلن به عنوان یکی از هورمون های گیاهی نقش های متعددی را در فرایندهای فیزیولوژیکی شامل جوانه زنی بذر، ریشهزایی قلمه، پیری و ریزش اندام های گیاهی ایفا می کند. طی مطالعات گذشته، پنج ژنوتیپ متحمل و بسیار حساس به اتیلن از میان بیش از 200 ژنوتیپ رز براساس ریزش اندام های برگ و جوانه گل شناسایی شدند. در این تحقیق، ریشه زایی و رشد قلمه های ژنوتیپ های انتخابی مورد مطالعه قرار گرفت. نتایج نشان داد که بین ژنوتیپ های مورد مطالعه از نظر ریشه زایی قلمه های دو سانتی متری اختلاف آماری معنی دار وجود نداشت، در حالی که ژنوتیپ ها از نظر ریشه زایی قلمه های یک سانتی متری اختلاف آماری معنی داری را نشان دادند. تیمار ایندول بوتیریک اسید اثری بر میزان ریشه زایی قلمه ها نداشت. بیشترین و کمترین میانگین زمان ریشه زایی به ترتیب در ژنوتیپ 67/76 و رقم ونیلا به دست آمد. وجود اختلاف معنی دار بین ژنوتیپ ها از لحاظ صفات مختلف مورد اندازه گیری از قبیل میزان رشد جوانه جانبی، وزن خشک ریشه و وزن اندام های هوایی، می تواند به ویژگی های فردی هر ژنوتیپ نسبت داده شود. داده های این تحقیق نشان داد که ریشه زایی ژنوتیپ های مورد مطالعه تحت تأثیر میزان حساسیت آنها به اتیلن نمی‌باشد.

کلیدواژه‌ها


عنوان مقاله [English]

An investigation on rooting and growth of stem cuttings of rose genotypes show high and low sensitivity to exogenous ethylene treatment

نویسنده [English]

  • Nourollah Ahmadi
چکیده [English]

Ethylene as a plant hormone plays various functions in a variety of physiological phenomena including seed germination, root initiation on stem cutting, senescence and organs abscission. In our previous investigation, five rose genotypes were identified showing high-sensitivity or low-sensitivity to exogenous ethylene treatment. The purpose of this study was to evaluate the rooting capacity and bud growth in stem cuttings of these genotypes. Although significant differences were found in rooting ability of 1-cm cuttings but 2-cm cuttings did not show any difference. IBA treatment did not affect root formation in low sensitive or high sensitive plants. The highest and lowest mean rooting time belong to genotypes '76.67' and 'Vanilla' respectively. There were significant differences in plant height and dry weight of shoots and roots of genotypes. This study showed that the rooting capacity was not affected by degree of plant sensitivity to ethylene.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Hormone
  • IBA
  • Rooting time
  • Rose
  • Stem cutting

1 . Ahmadi N, Mibus H and Serek M (2008) Isolation of an ethylene induced putative nucleotide laccase in miniature roses (Rosa hybrida L.). Plant Growth Regulation. 27: 320-330.  

2 . Ahmadi N, Mibus H and Serek M (2009) Characterization of ethylene-induced organ abscission in F1 breeding lines of miniature roses (Rosa hybrida L.). Postharvest Biology and Technology. 52: 260-266.

3 . Batten DJ and Mullins MG (1978) Ethylene and adventitious root formation in hypocotyl segments of etiolated mung bean. Planta. 138: 193-197.

4 . Bleecker AB, Estelle MA, Somerville C and Kende H (1988) Insensitivity to ethylene conferred by a dominant mutation in Arabidopsis thaliana. Science. 241: 1086-1089.

5 . Bredmose N, Kristiansen K and Nielsen B (2004) Propagation temperature, PPFD, auxin treatment, cutting size and cutting position affect root formation, axillary bud growth and shoot development in miniature rose (Rosa hybrida L.) plants and alter homogeneity. Horticultural Science and Biotechnology. 79: 458-465.

6 . Carelli BP and Echeverrigaray S (2002) An improved system for the in vitro propagation of rose cultivars. Scientia Horticulturae. 92: 69-74.

7 . Clark DG, Gubrium EK, Barrett JE, Nell TA and
Klee HJ (1999) Root formation in ethylene-insensitive plants. Plant Physiology. 121: 53-60.

8 . Copes PL and Mandel NL (2000) Effect of IBA and NAA treatments on rooting Douglas-fir stem cuttings. New Forest. 20: 249-257.

9 . Dodd D (2011) Rose. University of California Santa Cruz, Art department, Retrieved January 15, Online: http://artsites.ucsc.edu/GDead/agdl/rose.html

10 . Dubois LAM and de Vries DP (1991) Variation in adventitious root formation of softwood cuttings of Rosa chinensis minima (Sims) Voss cultivars. Scientia Horticulturae. 47: 345-9.

11 . Fett-Neto AG, Fett JP, Goulart LWV, Pasquali G, Termignoni RR and Ferreira AG (2001) Distinct

effects of auxin and light on adventitious root development in Eucalyptus saligna and Eucalyptus globulus. Tree Physiology. 21: 457-464.

12 . Fogaça CM, Fett-Neto AG (2005) Role of auxin and its modulators in the adventitious rooting of Eucalyptus species differing in recalcitrance. Plant Growth Regulation. 45: 1-10.

13 . Harkness P (1998) Botanica’s Roses, The Encyclopedia of Roses. Pp. 16-31.

14 . Hartmann HT, Kester DE and Davies FT (1990) Plant propagation principles and practices (5th Ed.). Pearson Prentice Hall.

15 . Mattock J (1998) The rose and its heritage. In: Botanica’s Roses, The Encyclopedia of Roses. Pp. 24-32.

16 . Pedersen MK, Burton JD and Coble HD (2006) Effect of cyclanilide, ethephon, auxin transport inhibitors, and temperature on whole plant defoliation. Crop Science. 46: 1666-1672.

 17 . Phatak SC, Jaworski CA and Liptay A (1981) Flowering and adventitious root growth of tomato cultivars as influenced by ethephon. HortScience.
16: 181-182.

18 . Podwyszyńska M and Goszczyńska D (1998) Effect of inhibitors of ethylene biosynthesis and action, as well as calcium and magnesium on rose shoot rooting, shoot-tip necrosis and leaf senescence in vitro. Acta Physio­logia Plantarum. 20: 91-98.

19 . Robbins JA, Kays SJ and Dirr MA (1983) Enhanced rooting of wounded mung bean cuttings by wounding and ethephon. American Society Horticulture Science. 108: 325-329.

20 . Taiz L and Zeiger E (2006) Ethylene: The Gaseous Hormone. In: Plant Physiology. Sinauer Assoc. Sunderland, MA. Pp. 571-591.

21 . Zaid H, El Morabet R, Diem HG and Arahou M (2003) Does ethylene mediate cluster root formation under iron deficiency? Annals of Botany. 92: 673-677.