بررسی خصوصیات بیولوژیکی و فنولوژیکی گل جالیز در پارازیتیسم با بادام رقم مامایی

نویسندگان

1 دانشیار، بخش علف های هرز، مؤسسه تحقیقات گیاه پزشکی کشور، تهران

2 کارشناس ارشد، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی چهارمحال و بختیاری، شهرکرد، چهارمحال و بختیاری

3 استاد، گروه زراعت و اصلاح نباتات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، کرج، البرز

4 دانشیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، کرج، البرز

چکیده

بیولوژی و فنولوژی گل جالیز روی بادام رقم مامایی در باغ‌های امامیه شهرکرد در سال 1383 مطالعه شد. تعداد 20 درخت از باغ های دارای سابقه آلودگی زیاد به انگل انتخاب و مطالعات مختلف بیولوژیکی و فنولوژیکی روی آنها انجام گرفت. نتایج نشان داد که بادام رقم مامایی برای تکمیل مراحل مختلف فنولوژی خود (از شروع گل دهی تا رسیدگی میوه) نیاز به 5/2120 درجه - روز رشد دارد. براساس دمای پایه 5/9 درجه سانتی گراد، گل جالیز برای تکمیل دوره‌های جوانه‌زنی بذر، سبز شدن ساقه، گل دهی و بذردهی به ترتیب به 209، 5/1125، 5/1414 و 961 درجه - روز رشد نیاز دارد. حداکثر عمق جوانه‌زنی بذر گل جالیز روی ریشه‌های بادام در عمق 18 سانتی‌متری بود و بیشترین آلودگی مربوط به ریشه‌هایی بود که در عمق نه تا 12 سانتی‌متری خاک قرار داشتند. بیشترین آلودگی روی ریشه‌های دارای قطر معادل نه تا 9/11 میلی‌متر مشاهده شد.

کلیدواژه‌ها


عنوان مقاله [English]

Assessment of biological and phenological aspects of broomrape (Orobanche nana) in parasitism with Almond (Prunus dulcis)

نویسندگان [English]

  • Mohammad Ali Baghestani 1
  • Delavar Baghestani 2
  • Hamid Rahimian mashhadi 3
  • Hasan Mohammad Alizade 4
چکیده [English]

The biology and phenology of broomrape (Orobanche nana) on Almond (Prunus dulcis cv. Mamaei) was studied during the growth season in Shahrekord city of Iran in 2004. Twenty trees which were infested by broomrape, were selected. Results indicated that almonds need 2120.5 growth degree days (GDD) to complete phenological stages from flowering to fruit ripening. Based on the cardinal temperature of broomrape (9.5°C), the parasite weed needs 209, 1125.5, 1414.5 and 961 GDD for completion of seed germination, stem emergence, flowering and seeding stages, respectively. Maximum seed germination occurred at the depth of 18 cm. Maximum root infection was observed at the depth of 9 to 12 cm. The highest infection to this parasite plant was recorded on roots with 9 to 11.9 mm diameter.

کلیدواژه‌ها [English]

  • almond
  • Biology
  • germination
  • growth degree days
  • root
  • seed

1. اسفندیاری ح (1378) شناسایی و بررسی تراکم گل جالیز در استان چهارمحال و بختیاری. مرکز تحقیقات کشاورزی چهارمحال و بختیاری. گزارش نهایی. 9 صفحه.

2. ایمانی ا (1379) اصلاح بادام. چاپ آموزش و تحقیقات کشاورزی. تهران، ایران. 234 صفحه.

 3. مین­باشی معینی م (1382) گل جالیز: گیاه­شناسی،  زیست­شناسی، اکولوژی و کنترل آن. چاپ مؤسسه تحقیقات آفات و بیماری­های گیاهی. تهران، ایران 33 صفحه.

4. مین­باشی معینی م (1385) اکوفیزیولوژی گل جالیز. زیتون. 172: 10-1.  

 

5. Alistair JM and Kebreab E (2005) Temperature dependence of Orobanche germination and implication for the northward spread of Orobanche within Europe. In: Proceeding of the Workshop on Means for Limiting Orobanche Propagation and Dispersal in Agricultural Field. 4-6 December, Newe-Yaar Research Center, Israel. Pp. 15-16.

6. Castejon M, Romero-Munoz F and Garcia L (1987) Phenology and control of Orobanche cernua in sunflower with glyphosate. In: Weber HC and Forstreuter W (Eds.), Parasitic flowering plants. Marburg, F.R.G., Pp. 121-126.

7. Eizenberg H,Colquhoun J and Mallory-Smith C (2005) A predictive degree-days model for small broomrape (Orobanche minor) parasitism in red clover in Oregon. Weed Sci. 53: 37-40.

8. Eizenberg H, Goldwasser Y, Golan S, Hershenhorn J and Kleifeld Y (2001) Orobanche aegyptiaca control in tomato (Lycopersicon esculentum) with chlorsulfuron. In: Fer AP, Thalouarn DM, Joel L, Musselman J, Parker C and Verkleij JAC (Eds.), Proceedings of the 7th International Parasitic Weed Symposium. Nantes, France: Faculté des Sciences, Université de Nante. Pp. 293-294.

9. Eizenberg H, Lande T, Achdari G, Roichman A and Hershenhorn J (2007) Effect of Egyptian broomrape (Orobanche aegyptiaca) seed-burial depth on parasitism dynamics and chemical control in tomato. Weed Sci. 55: 152-156.

10. Foy CL, Jain R and Jacobsohn R (1989) Recent approaches for chemical control of broomrape (Orobanche spp.) Rev. Weed Sci. 4: 123-152.

11. Garcia-Torres L (1994) Progress in Orobanche control, an overview. In: Proceeding 3rd International Workshop on Orobanche and related Striga Research. Amesterdam, The Netherlands. Pp. 390-399.

12. Golwasser Y, Eizenberg H, Hershenhorn J, Plakhine D, Blumenfeld T, Buxbaum H, Golan S and Kleifeld Y (2001) Control of Orobanche aegyptiaca and O. ramose in potato. Crop Prot. 20: 403-410.

13. Gonzàlez-Andùjar JL, Martinez-Cob A, Lopez-Granados F and Garcia-Torres L (2001) Spatial distribution and mapping of crenate broomrape infestations in continious broad bean cropping. Weed Sci. 49: 773-779.

14. Hezewijk MJ, Verkleij JAC and Pieters AH (1991) Temperature dependence of germination in Orobanche crenata. In: Wegmann K and Musselman LJ (Eds.), Progress in Orobanche Research. Eberhard – Karls - Universitat, Tubingen, FRC. Pp. 125-133.

15. Hirsch AM, Bauer WD, Bird DM, Cullimore J, Tyler B and Yoder JI (2003) Molecular signal and receptor: Controlling rhizosphere interaction between plants and other organisms. Ecology. 84: 858-868.

16. Lins  RD, Colquhoun JB and Mallory-smith CA (2005) Investigating of wheat as a trap crop for control of Orobanche minor. Weed Res. 46: 313-318.

17. Morozov, IV Foy GL and Westwood JH (2000) Small broomrape (Orobanche minor) and egyptain broomrape (Orobanche aegyptiaca) parasitization of red clover (Trifolium pratense). Weed Technol. 14: 312-320.

18. Musselman LY (1986) Taxonomy of Orobanche. In: Proceeding of Workshop on Biology Control of Orobanche, pp. 2–10 (Ed: Ter Borg SJ) Wageningen, The Netherlands. pp. 25-29.

19. Parker C (1994) The present state of the Orobanche problem. In: Proceeding 3rd International Workshop on Orobanche and related Striga Research. Amesterdam, The Netherlands. Pp. 17-26.

20. Parker C and Riches CR (1993) Parasitic weeds of the world – Biology and control. C.A.B. International, Wallingford, UK.332 pp.

21. Rattigan K and Hill SJ (1985) Relationship between temperature and flowering in almond. Aust. J. Exp. Agr. 26: 399-404.

22. Ruso J, Sunko S, Domiguez – Gimenez J, Melero – Vara JM and Fernadez – martinez J (1996) Screening for wild  helianthus species and derived lines for resistance to several population of O. cernua. Plant Dis. 90: 1165-1169.

23. Saghir AR (1986) Dormancy and germination of Orobanche seeds in relation to control methods. In: Ter Borg SJ (Ed.) Proceedings a Workshop on Biology and Control of Orobanche, LH/VPQ, Waghenigen, The Netherlands. Pp. 25-34.

24. Sauerborn Y, Saxena MC and Mayey A (1989) Broomrape control in fabe (V. faba) with glyphosate and imazequine Weed Res. 29: 97-102.

25. Sukno S, Fernàndez-Martinez JM and Melero-Vara JM (2001) Temperature effects on the disease reaction of sunflower to infection by Orobanche cumana. Plant Dis. 85: 553-556.

26. Swanton CJ, Huang JZ  Shrestha A Tollenar M Deen W and Rahimian H (2000) Integrated weed management: Effects of temperature and photoperiod on the phenological development of barnyardgrass. Agron. J. 92: 1125-1134.