ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی میزان تحمل به انجماد سروبادبزنی (نوش) و سرونقرهای در شرایط کنترل شده
سرو نقرهای (L. Cupressus arizonica) و سرو بادبزنی (Thuja orientalis L.) از مهمترین درختان همیشهسبز زینتی مورد استفاده در فضای سبز شهری میباشند. این مطالعه با هدف بررسی تحمل به انجماد این دو گونه گیاهی در شرایط کنترلشده در دو آزمایش مستقل با هشت سطح دمایی (شاهد، 10-، 15-، 20-، 25-، 30-، 35-، 40- درجه سانتیگراد) در قالب طرح کاملاً تصادفی اجرا گردید. در این پژوهش میزان پرولین، نشت یونی، تغییرات کربوهیدرات (از نمونههای برگی) و رشد مجدد مورد بررسی قرار گرفتند. نتایج نشان داد که با کاهش دما محتوی پرولین و نشت یونی در هر دو گونه افزایش یافت. با کاهش دما کاهش چشمگیری در رشد مجدد هر دو گونه مشاهده شد، بهطوریکه در 30- و20- درجه سانتیگراد بهترتیب در سروبادبزنی و نقرهای هیچگونه رشد مجددی مشاهده نشد. مقادیر کربوهیدرات محلول در سرو بادبزنی با کاهش دما افزایش کم و غیرمعنیدار ولی در سرو نقرهای بهطور معنیداری کاهش یافت. همبستگی منفی معنیدار بین رشد مجدد و دما در سروبادبزنی (895/0-) و نقرهای (646/0-) مشاهده شد. سرونقرهای نسبت به یخزدگی حساستر از و سرو بادبزنی بود.
https://jci.ut.ac.ir/article_60388_7b9f3595a3eccf1493f0845551ba68d8.pdf
2018-07-23
315
327
10.22059/jci.2017.60388
پرولین
رشد مجدد
کربوهیدرات محلول
نشت یونی
همبستگی
حمیده
ایگدری
igdarih@yahoo.com
1
دانش آموخته کارشناسی ارشد باغبانی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد شیروان، خراسان شمالی، ایران
LEAD_AUTHOR
ابراهیم
گنجی مقدم
eganji@hatmail.com
2
دانشیار بخش تحقیقات علوم زراعی و باغی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی خراسان رضوی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، مشهد، ایران.
AUTHOR
احمد
اصغر زاده
asg.ahmad@yahoo.com
3
استادیار گروه باغبانی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد شیروان، خراسان شمالی، ایران
AUTHOR
احمدلو ف، طبری م، رحمانی ا و یوسفزاده ح (1388) اثر ترکیبات خاک بر رشد و راندمان نهالهای سرونقرهای و زربین در نهالستان. علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی. 13(48): 437-447.
1
امام م (1382) تکثیر درونشیشهای درخت نوش (Thuja orientalis L.) از طریق سرشاخههای آن. تحقیقات ژنتیک و اصلاح گیاهان مرتعی و جنگلی ایران. 11(1): 1-15.
2
باقری ع (1379) اصلاح حبوبات سرمادوست برای تحمل به تنشها. وزارت کشاورزی. 446 صفحه.
3
باغبانها م ر، فتوحی قزوینی ر، حاتمزاده ع و حیدری م (1386) اثر سالیسیلیک اسید بر تحمل تنش یخزدگی دانهالهای لیموآب شیراز. 8 (3): 185-198.
4
پورعسگری ع م و پورلزرجانی (1384) راهنمای تولید نهال، درختکاری و معرفی تعدادی از درختان و درختچههای جنگلی. مؤسسه تحقیقات جنگلها و مراتع کشور. 138 صفحه.
5
جوانشاه ا (1379) مطالعه گلدهی پسته و روشهایی برای به تأخیراندازی آن بهمنظور جلوگیری از سرمازدگی بهاره. دانشگاه تربیت مدرس. تهران. رساله دکتری. 167 صفحه.
6
حسینی س م، علیعرب ع ر، اکبری نیا م، جلالی س غ، طبری م، علمی م ر و رسولی اکردی ی د (1385) اثر تیمارهای مختلف شدت نور بر رشد ارتفاعی، شادابی و زندهمانی نهالهای سرو نقرهای در نهالستان. پژوهش و سازندگی. 72: 25-31.
7
داوری نژاد غ ح، منصوری ده شعیبی ر، حکمآبادی ح و تهرانیفر ع (1390) ارزیابی تغییرات پرولین، پروتئین کل و قندهای محلول در طی مراحل فنولوژی جوانه گل ارقام پسته. علوم باغبانی. 25(2): 116-121.
8
رضایی ج، نظامی ا و علیزاده ب (1389) ارزیابی تحمل به تنش سرما در چند گونه علف چمنی با استفاده از آزمون نشت الکترولیتها. آب و خاک. 24(5): 1019-1026.
9
زارع ح (1380) گونههای بومی و غیربومی سوزنیبرگ ایران. انتشارات مؤسسه تحقیقات جنگلها و مراتع. 498 صفحه.
10
سلطانی ا (1376) طبقهبندی پارکها و مناطق حفاظتشده ایران از نظر گونههای شاخص گیاهی و جانوری. پایاننامه کارشناسی ارشد دانشکده منابع طبیعی. دانشگاه تهران. 140 صفحه.
11
سلاحورزی ی، نظامی ا، داورینژاد غ، تهرانیفر ع، و نعمتی ح (1389) بررسی پاسخهای فیزیوشیمیایی شش رقم انار خراسان رضوی در تنش یخزدگی. مجله علوم و فنون باغبانی. 3(11): 197-208.
12
عابدی ب، تفضلی ع ا، راحمی م، خلد برین ب، و گنجی مقدم ا (1389) تغییرات قندها، نشاسته، پرولین و آبمیانبافتی در مواجه به سرما در برخی از ارقام زردآلو (Prunus armeniaca L.). مجله علوم باغبانی. 41(4): 375-382.
13
کیخا آخر م، نطامی ا، ایزدی ا، موسوی م ج، یوسف ثانی م و نظانی س (1388) اثر تنش سرما بر گیاه دارویی- زینتی بنفشه (Viola gracilis) در شرایط کنترلشده. همایش ملی تنشهای محیطی در علوم کشاورزی (چکیده).
14
میرمحمدی میبدی ع و اصفهانی س (1379) جنبههای فیزیولوژی و بهنژادی تنشهای سرما و یخزدگی گیاهان زراعی. انتشارات گلبن اصفهان. 336 صفحه.
15
نوری ش (1374) بررسی سوزنیبرگان در جنگلکاریهای شمال کشور. دفتر جنگلکاری و پارکهای سازمان جنگلها و مراتع کشور. 84 صفحه.
16
نظامی ا، موسوی م ج، نظامی س، ایزدی دربندی ا، یوسف ثانی م، و کیخاآخر ف (1390) مطالعه اثرات تنش یخزدگی بر گیاه مینایچمنی (Bellis perennis)در شرایط کنترلشده. نشریه آب و خاک. 2(25):380-388.
17
Aaron J, Suzanne M, Volenec J and Zachary J (2007) Differences in freeze tolerance of Zoysiagrasses. II. Carbohydrate and proline accumulation. Crop Science. 47: 2170-2181.
18
Bigras FJ (1997) Root cold tolerance of black spruce seedlings: viability tests in relation to survival and regrowth. Tree Physiology. 17: 311-318.
19
Blum A (1988) Plant breeding for stress environments. CRC Press, Inc., Boca Raton, FL, 223 p.
20
Boorse GC (1998) Comparative methods of estimating freezing temperatures and freezing injury in leaves of chaparral shrubs. International Journal of Plant Sciences. 159: 513-521.
21
Bradford KJ and Hsiao TC (1982) Physiological response to moderate stress. In: Lange OL. Nobel PS. Osmond CB and Ziegler H (Eds.), Encyclopedia of plant physiology. Physiological plant ecology. New York. pp. 263-324.
22
Cardona CA, Duncan RR and Lindstrom O (1997) Low temperature tolerance assessment in paspalm. Crop Science. 37: 1283-1291.
23
Chen YZ and Ane L (2005) The relationship between seasonal changes in anti oxidative system and freezing tolerance in the leaves in woody plants. Science Horticulture. 73: 272-279.
24
Eugenia M, Nunes S and Ray Smith G (2003) Electrolyte leakage assay capable of quantifying freezing resistance in rose clover. Crop Science. 43: 1349-1357.
25
Strimbeck GR, Kjellsen TD, Schaberg PG and Murakami PF (2007) Cold in common garden: comparative low-temperature tolerance of boreal and temperate conifer foliage. Trees. 21: 557-567.
26
Griesbach RJ and Berberich SM (1995) The early history of research on ornamental plants at the US. Department of agriculture from 1862 to 1940. HortScience. 30: 421-425.
27
Hare PD and Cress WA (2004) Implications of stress induced proline accumulation in plant. African Journal of Biotechnology. 9(7): 1008-1015.
28
Hidekazu S, Kazuo I and Masayuki O (1996) Changes in sugar content during cold acclimation and deacclimation of cabbage seedlings. Annals of Botany. 78: 365-369.
29
Hofgard IS, Vollsnes AV, Marum P, Larsen A and Tronsmo AM (2003) Variation in resistance to different winter stress factors within a full-sub family of perennial ryegrass. Euphytica. 134: 61-75.
30
Irigoyen JJ, Emerich D W and Sanchez-Diaz M (1992) Water stress induced changes in concentrations of prolin and total soluble sugars in nodulated alfalfa (Medicago sativa) plants. Physiologia Plantarun. 84: 55-60.
31
Kim DC and Anderson NO (2006) Comparative analysis of laboratory freezing methods to establish cold tolerance of detached rhizomes and intact crowns in garden chrysanthemums (Dendranthema X grandiflora tzvelv). Scientia Horticulture. 109: 345-352.
32
Larcher W (2001) Okophysiologie de Pflanzen (Stuttgart: Eugen ulmer) ISBN-B978-382528074 p.302.
33
Levitt J (1980) Response of plants to environment stresses, chilling, freezing and high temperature stresses. I: Academic Press, New York, 365 p.
34
Linden L (2002) Measuring cold hardiness in woody plants. PhD. thesis. Helsinki Univ. Pub. 57 p.
35
Morin X, Ameglio T, Ahas R, Kurz-Besson C, Lanta V, Leburgeois F, Miglietta F and Chuine I (2007) Variation in cold hardiness and carbohydrate concentration from dormancy induction to bud burst among provenances of three European oak species. Tree Physiology. 27: 817-825.
36
Paolo B, Luca P, Ari M, Hietala and Nicola La P (2011) Cold tolerance in cypress (Cupressus sempervirens L.): a physiological and molecular study. Tree Genetics and Genomes. 7: 79-90.
37
Paquine R and Lechasseur P (1979) Observations sur une méthode de dosage de la proline libre dans les extraits de plantes. Canadian Journal of Botany. 57: 1851-1854.
38
Sakai A and Yoshida S (1968) The role of sugar and related compounds in variations of freezing resistance. Cryobiology. 5:160-174.
39
Seppanen MM (2000) Characterize of freezing tolerance in Solanum commersonii (dun.) with special reference of the relationship between and oxidative stress. University of Helsinki, Department of production, section of crop Husbandry. 56: 4-44.
40
Still S, Disabato A and Brenneman G (1988) Cold hardiness of herbaceous perennials. Proceeding International Plant Propagation Society. 37: 386-392.
41
Vines RA (1960) Trees, Shrubs and woody vines of the southnest. Austin. University of texas Press. 1104 p.
42
Warmund RM, Guinan P and Fernandez G (2008) Temperatures and cold damage to small fruit crops across the eastern associated with the aprill 2007 freeze. Horticultural Science. 43: 1643-1647.
43
Xavier M and Ameglio T (2007) Variation in cold hardiness and carbohydrate concentration from dormancy induction to bud burst among provenance of three European Oak Species. Tree Physiology. 27: 817-825.
44
Yamada T, Kuroda K, Jitsuyama Y, Takezawa K, Arakawa K and Fujikawa S (2002) Roles of the plasma membrane and the cell wall in the responses of plant cells to freezing. Planta. 215: 770-778.
45
Yelonsky G (1979) Accumulation of free proline in citrus leaves during cold hardening of young tree in controlled temperature regimes. Plant Physiology. 64: 425-427.
46
Zimmerman EM, Jull LG and Shirazi AM (2005) Effects of Salinity and freezing on Acer platanoides, Tilia cordata, and Viburnum lantana. Search Results The Journal of Environmental Horticulture. 23(3): 138-144.
47
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر تغذیه روی بر کاهش خسارت اکسیداتیو ناشی از تنش شوری در دو رقم زیتون
از اثرهای مخرب شوری، افزایش رادیکالهای آزاد در سلولهای ریشه و در نتیجه افزایش نشت یونی در این سلولهاست. به منظور بررسی تاثیرعنصرروی بر برخی آنزیم های مهارکنندهی رادیکالهای آزاد (کاتالاز و آسکوربات پراکسیداز) و کاهش صدمات ناشی از تنش شوری حاصل از کلرید سدیم در دو رقم زیتون (,فرانتویو، و ,کنسروالیا،) آزمایشی گلدانی به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی انجام شد. در این آزمایش نهالهای یک ساله دو رقم زیتون به مدت 8 هفته در معرض چهار سطح شوری صفر، 40، 80 و 120 میلی مولار کلرید سدیم و سه غلظت صفر، یک و پنج میکرومولار روی از منبع سولفات روی (ZnSO4.7H2O) قرار گرفتند. نتایج نشان داد اگرچه با افزایش سطوح شوری، نشت یونی پتاسیم و روی در ریشه و فعالیت آنزیم های کاتالاز و آسکوربات پراکسیداز در برگ افزایش یافت اما با افزایش سطوح روی، نشت یونی پتاسیم و روی کاهش یافته، اگرچه فعالیت آنزیم های کاتالاز و آسکوربات پراکسیداز افزایش یافت. نتایج نشان داد که بافت ریشه رقم ,فرانتویو، در مقایسه با رقم ,کنسروالیا، غلظت گروه های سولفهیدریل بیشتر و نیز نشت یون های پتاسیم و روی کمتری دارد. برهمین اساس، رقم ,فرانتویو، در مقایسه با رقم ,کنسروالیا، در برابر تنش اکسیداتیو حاصل از تنش شوری متحملتراست.
https://jci.ut.ac.ir/article_60393_c0db53cf620eee73debc1cf82165567b.pdf
2018-07-23
329
343
10.22059/jci.2017.60393
آسکوربات پراکسیداز
آنزیمهای آنتیاکسیداتیو
سولفهیدریل
کاتالاز
نشت یونی
محمد رضا
نائینی
naeini2000@yahoo.com
1
دانشجوی دکترای باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان
AUTHOR
محمود
اثنی عشری
m.esnaashari@basu.ac.ir
2
استاد گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان، ایران
LEAD_AUTHOR
امیرحسین
خوشگفتارمنش
amirkhosh@iut.ac.ir
3
استاد گروه علوم خاک، دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی اضفهان
AUTHOR
محمد هادی
میرزاپور
mhmirzap@yahoo.com
4
دانشآموخته کارشناسی ارشد، بخش تحقیقات زراعی باغی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان قم، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، قم، ایران.
AUTHOR
ارجی ع، زینانلو ع، حاجی امیری ا و نجفی م (1391) بررسی سازگاری و خصوصیات رویشی و زایشی برخی از ارقام زیتون در شرایط آبوهوایی سر پل ذهاب. مجله علمی کشاورزی تولیدات گیاهی. 35(4):18-28.
1
زینانلو ع ا (1389) ارزیابی خسارت سرمازدگی و انتخاب ارقام متحمل به سرما در زیتون. گزارش نهایی پروژه تحقیقاتی. مؤسسه تحقیقات اصلاح و تهیه نهال و بذر. بخش تحقیقات باغبانی. کرج. شماره ثبت 1246/89. 61 ص.
2
خوشگفتار منش ا ح (1386) مبانی تغذیه گیاه. انتشارات دانشگاه صنعتی اصفهان. 463 ص.
3
سعادتی ص و معلمی ن (1390) بررسی تأثیر محلولپاشی عنصر روی بر رشد و عملکرد گیاه توتفرنگی در شرایط تنش شوری. مجله علوم باغبانی ایران. 2(3): 275-263.
4
عسکری م، امینی ف و جمالی ف (1393) اثرات روی بر رشد، مقدار رنگیزههای فتوسنتزی، پرولین، پروتئین و کربوهیدراتهای گوجهفرنگی تحت تنش شوری. فصلنامه فرآیند و کارکرد گیاهی. 3(9): 58-45.
5
Cakmak I (2000) Possible roles of zinc in protecting plant cells from damage by reactive oxygen species. New Phytologist. 146: 185-205.
6
Daneshbakhsh B, Khoshghoftarmanesh A H, Shariatmadari H and Cakmak I (2012) Effect of Zinc nutrition on salinity-induced oxidative damages in wheat genotypes differing in zinc deficiency tolerance. Acta Physiologiae Plantarum. 5(1): 1131-7.
7
Dhindsa RA, Plumb-Dhindsa P and Thorpe TA )1981( Leaf Senescence: Correlated with increased levels of membrane permeability and lipid peroxidation, and decreased levels of superoxide dismutase and catalase. Journal of Experimental Botany. 126: 93-101.
8
Dionisio-Sese M L and Tobita S (1998) Antioxidant responses of rice seedlings to salinity stress. Plant Science. 135: 1-9.
9
Eraslan F, Inal A, Savasturk O and Gunes A (2007) Changes in antioxidative system and membrane damage of lettuce in response to salinity and boron toxicity. Scientia Horticulturae. 114 : 5-10.
10
Esfandiari E, Shekari F, shekari F and Esfandiari M (2007) The effect of salt stress on antioxidant enzymes activity and lipid peroxidation on the wheat seedling.Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca. 35(1): 48-56.
11
Gossett DR, Millhollon EP and Lucas MC (1994) Antioxidant response to NaCl stress in salt-tolerant and salt sensitive cultivars of cotton. Crop Science. 34: 706-714.
12
Gucci R and Tattini M (1997) Salinity tolerance in olive. Horticultural Reviews. 21:177-213.
13
Hall JL (2002) Cellular mechanisms for heavy metal detoxification and tolerance. Journal of Experimental Botany. 53: 1-11.
14
Halliwell B (1982) The toxic effects of activated oxygen on plant tissues, In: Oberley LW (Ed.), Superoxide Dismutase, CRC Press, Boca Raton, FL. pp. 89-123.
15
Kaiser W (1976) The effect of hydrogen peroxide on CO2 fixation of isolated intact chloroplast. Biochimica et Biophysica Acta. 440: 476-482.
16
Kamrani 1R, Ardalan M and Farahbakhsh M (2013) The interaction Zn application and salinity on the yield and zinc concentration in grain wheat. International Journal of Agronomy and Plant Production. 4(8): 2075-2080.
17
Khoshgoftarmanesh A H and Naeini M R (2008) Salinity Effect on Concentration, Uptake, and Relative Translocation of Mineral Nutrients in Four Olive Cultivars. Journal of Plant Nutrition. 31: 1243-1256.
18
Mirzapour M H and Khoshgoftarm anesh A H (2013) Effect of soil and foliar application of iron and zinc on quantitative and qualitative yield of pomegranate. Journal of Plant Nutrition. 36: 55-66.
19
Nakano Y and Asada K (1981) Hydrogen peroxide is scavenged by ascorbate specific peroxidase in spinach chloroplasts. Plant Cell Physiology. 22: 867-880.
20
Rugini E and Fedeli E (1990) Olive as an oilseed crop. In: Bajaj YPS (Ed.). Biotechnology in Agriculture and Forestry, Legumes and oilseed Crops. Springer-Verlag, Berlin, Germany. pp. 593-641.
21
Sairam RK, Rao KV and Srivastava GC (2002) Differential response of wheat genotypes to longterm salinity stress in relation to oxidative stress, antioxidant activity and osmolyte concentration. Plant Science. 163: 1037-1046.
22
Sanaeiostovar A, Khoshgoftarmanesh AH, Shariatmadari H, Afyuni M and Schulin R (2012) Combined effect of zinc and cadmium levels on root antioxidative responses in three different zinc efficiency wheat genotypes. Journal of Agronomy and Crop Science. 198(4): 276-285.
23
24 .Sang YK, Lim JH, Park MR, Kim YJ, Yong TP, Seo W, Choi KG and Yun SJ (2005) Enhanced antioxidant enzymes are associated with reduced hydrogen peroxide in barley roots under saline stress.Journal of Biochemistry and Molecular Biology. 38(2): 218-224.
24
Sedlak J and Lindsay RH (1968) estimation of total, protein-bound, and nonprotein sulfhydryle groups in tissue by ellman,s reagent. Analytical Biochemistry. 25: 192-208.
25
Weisany W, Sohrabi Y, Heidari G, Siosemardeh A and hassemi- Golezani K (2012) Changes in antioxidant enzymes activity and plant performance by salinity stress and zinc application in soybean (Glycine max L.).Plant Omics. 5(2): 60-67.
26
Tavallali V, Rahemi M, Eshghi S, Kholdebarin B and Ramezanian A (2010) Zinc alleviates salt stress and increases antioxidant enzyme activity in the leaves of pistachio (Pistacia vera L. ‘Badami’) seedlings. Turkish Journal of Agriculture and Forestry. 34: 349-359.
27
ORIGINAL_ARTICLE
اثر کود شیمیایی اوره و کودهای آلی و زیستی مختلف بر عملکرد کمی و کیفی و برخی از ویژگیهای خاک در کشت زعفران
به منظور بررسی اثرات کاربرد کودهای آلی، شیمیایی و زیستی بر ویژگیهای گیاه و خاک در کشت زعفران (Crocus sativus L.) آزمایشی به صورت فاکتوریل در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی در سه تکرار در مزرعه زعفران شش ساله دانشگاه شاهد تهران در سال زراعی 95-94 انجام گرفت. عامل اول کود شیمیایی نیتروژن (اوره)، در سه سطح (0، 50 و 100 کیلوگرم در هکتار) و عامل دوم کودهای آلی و زیستی مختلف در چهار سطح (شاهد، ورمی کمپوست، ریزوباکتریهای محرک رشد گیاه حاوی سودوموناس و باسیلوس و تلفیق ریزوباکتریهای محرک رشد گیاه و ورمی کمپوست) بود. نتایج آزمایش نشان داد که تیمارهای کودی عملکرد کمی و کیفی زعفران و ویژگیهای خاک را بهطور معنیداری تحت تاثیر قرار دادند. تلفیق ورمی کمپوست با 50 کیلوگرم در هکتار کود اوره بیشترین اثر معنیدار را در افزایش عملکرد کمی و بهبود ویژگیهای خاک داشت. بهطوری که در این تیمار 6/42 درصد عملکرد خشک کلاله، 67/66 درصد نیتروژن خاک، 39/68 درصد ماده آلی خاک و 75/43 درصد فسفر قابل جذب خاک نسبت به شاهد افزایش یافت. نتایج این آزمایش نشان داد که به جز تلفیق ورمی کمپوست با 50 کیلوگرم در هکتار کود اوره در اکثر موارد در تلفیق سایر تیمارهای کودی با یکدیگر نسبت به شاهد برتری معنیداری مشاهده نشد. به طور کلی، در کشت زعفران کاربرد تلفیقی ورمی کمپوست به همراه نصف مقدار کود اوره توصیه شده می تواند باعث افزایش عملکرد گیاه و بهبود ویژگی های خاک شود.
https://jci.ut.ac.ir/article_60472_b1185a9533f7ca1d69bf574fee5ae225.pdf
2018-07-23
345
356
10.22059/jci.2017.60472
باسیلوس
سودوموناس
کود زیستی PGPR
کود شیمیایی نیتروژن
ورمی کمپوست
اعظم
فعلی
azam.feli@shahed.ac.ir
1
دانشآموخته کارشناسی ارشد، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شاهد، تهران، ایران.
AUTHOR
سعیده
ملکی فراهانی
maleki@shahed.ac.ir
2
استادیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شاهد، تهران، ایران.
LEAD_AUTHOR
حسین
بشارتی
hbesharati@swri.ir
3
دانشیار، موسسه تحقیقات خاک و آب، کرج، ایران.
AUTHOR
اسکندری س، قربانی ر، رضوانیمقدم پ و نصیری م (1393) اثر کابرد منفرد و تلفیقی کودهای زیستی، شیمیایی و آلی بر خصوصیات کمی و کیفی گیاه دارویی مارتیغال. نشریه بومشناسی کشاورزی .6(3): 467-476.
1
احمدیآبادی ز، قاجار م و رحیمی س (1390) اثر کاربرد ورمیکمپوست بر برخی ویژگیهای فیزیکی و شیمیایی خاک. علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی، علوم آب و خاک. 15(58):125-137.
2
بدوی ه، عالمزاده ن و اطمینان س (1392) تأثیر کاربرد ورمیکمپوست غنی شده با کود شیمیایی بر برخی از خصوصیات مورفولوژیکی گوجهفرنگی قبل از تشکیل میوه. هشتمین کنگره علوم باغبانی ایران.
3
رستمی م و محمدی ه (1392) بررسی اثرات تاریخ کاشت و تراکم بنه بر رشد و عملکرد زعفران (Crucus sativus L.) در شرایط اقلیمی ملایر. نشریه بومشناسی کشاورزی. 5(1): 38-27.
4
رسولی ز، ملکی فراهانی س و بشارتی ه (1392) واکنش برخی از منابع رویشی زعفران (Crucus sativus L.) به منابع کودی مختلف. مجله پژوهشهای زعفران (علوم خاک و آب). 27(1). 6
5
رضوانی مقدم پ، محمدآبادی ع، فلاحی ح و اقحوانی م (1393) اثر مدیریت تغذیهای بر عملکرد گل و رشد بنه در گیاه زعفران مزروعی (Crocus sativus L.). علوم باغبانی. علوم و صنایع کشاورزی. 28(3):.434-427. 7
6
ملکی فراهانی س، مظاهری د و چاییچی م (1392) تأثیر کاربرد توام کودهای شیمیایی و ارگانیک بر خصوصیات شیمیایی گیاه و خاک در کشت جو در شرایط کمآبیاری. بهزراعی کشاورزی. 15(2): 74-61.
7
Ahmad R, Naveed M, Aslam M, Zahir ZA, Arshad M and Jilani G (2008) Economizing the use of nitrogen fertilizer in wheat production through enriched compost. Renewable Agriculture and Food Systems. 23: 243-249.
8
Alidadi H, Hosseinzadeh A, Najafpoor AA, Esmaili H, Zanganeh J, Dolatabadi M and Ghasemy F (2016) Waste recycling by vermicomposting: Maturity and quality assessment via dehydrogenase enzyme activity, lignin, water soluble carbon, nitrogen, phosphorous and other indicators. Environmental Management. 182: 134-140.
9
Amini S, Maleki Farahani S, Sharghi Y and Zahedi H (2014) Influence of vermicompost and bacterium of Bacillus and Pseudomonas on growth, yield and morphological traits of saffron. Applied Science and Agriculture. 9(3): 933-941
10
Azarmi R, Torabi M and Didar R (2008) Influence of vermicompost on soil chemical and physical properties in tomato (Lycopersicum esculentum) field. African Journal of Biotechnology. 7(14): 2397-2401.
11
Azarpoor E, Moradi M and Bozorgi HR (2012) Effect of Vermicompost application and seed inoculation with biological nitrogen fertilizer under different plant densities in Soybean (Glycin max L. cultivar, Williams). African Journal of Agricultural Research. 7: 1534-1540.
12
Berger LR, Stamford NP, Santos CERS, Freitas ADS, Franco LO and Stamford TCM (2013) Plant and soil characteristics affected by biofertilizers from rocks and organic matter inoculated with diazotrophicbacteria and fungi that produce chitosan. Soil Science and Plant Nutrition. 13(3): 592-603.
13
Edwards CA (2004) Earthworm Ecology. Published by CRC Press. Boca Raton. Second edition. 441 pp.
14
Hu XF, Chen J and Guo JF )2006( Two phosphate and potassium solubilizing bacteria isolated fromTiannumountain, Zhejiang, China. World Journal of Microbiology and Biotechnology. 22: 983-990.
15
Iqbal AM, Samad SS, Aijaz AA, Nehvi FA, Gowhar A, Niyaz AD and Aijaz AL (2012) Impact of Corm weight on Saffron yield under Temperate Conditions of Kashmir. Vegetos. 25(2): 303-305.
16
ISO/TS 3632-1/2 (2003) Technical Specification. Saffron (Crocus sativus L). Ed. ISO. Geneva. Switzerland.
17
Marulanda A, Barea JM and Azcon R (2009) Stimulation of plant growth and drought tolerance by native microorganisms (AM fungi and bacteria) from dry environments: mechanisms related to bacterial effectiveness. Plant Growth Regulation. 28: 115-124.
18
Parray JA, Kamili1 AN, Reshi ZA, Hamid R and Qadri RA (2013) Screening of beneficial properties of rhizobacteria isolated from Saffron (Crocus sativus L) rhizosphere. African Journal of Microbiology Research. 7(23): 2905-2910.
19
Ravindran B, Wong JWC, Selvam A and Sekaran G (2016) Influence of microbial diversity and plant growth hormones in compost and vermicompost from fermented tannery waste. Bioresource Technology. 217: 200-204.
20
Roy S, Arunachalam K, Dutta BK and Arunachalam A (2010) Effect of organicamendments of soil on growth and productivity of three common crops viz Zea mays, Phaseolus vulgaris and Abelmoschus esculentus. Applied Soil Ecology .45(2): 78-84.
21
Shirani H, Abolhasani M, Lakzian A and Akhgar A (2011) Decomposition rate of municipalwastes compost, vermicompost, manure and pistaco compost in different soil texture and salinity inlaboratory condition. Water and Soil. 25: 84-93.
22
Singh R, Divya S, Awasthi A and Kalra A )2012( Technology for efficient and successful delivery of vermicompost colonized bioinoculants in Pogostemon cablin (patchouli) Benth. Microbiologyand Biotechnology. 28: 323-333.
23
Song X, Liu M, Wu D, Griffiths BS, Jiao J, Li H and Hu F (2015) Interaction matters: Synergy between vermicompost and PGPR agents improves soil quality, crop quality and crop yield in the field. Applied Soil Ecology. 89: 25-34.
24
Yang L, Zhao F, Chang Q, Li T and Li F (2015) Effects of vermicomposts on tomato yield and quality and soil fertility in greenhouse under different soil water regimes. Agricultural Water Management. 160: 98-105.
25
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی رشد، عملکرد و پاسخ های فیزیولوژیکی هندوانه ابوجهل تحت شرایط تنش کم آبیاری
به منظور بررسی اثر تنش کم آبیاری بر رشد، عملکرد و شاخصهای فیزیولوژیکی هندوانه ابوجهل، آزمایشی در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار انجام شد. سطوح آبیاری شامل 100 درصد نیاز آبی گیاه و دو سطح کم آبیاری 70 و 50 درصد نیاز آبی گیاه بود. نتایج نشان داد که تنش کمآبیاری، رشد و عملکرد میوه را به طور معنیداری کاهش داد. کمترین سطح برگ، طول بوته، تعداد میوه و عملکرد در تیمار کم آبیاری 50 درصد حاصل شد. با افزایش تنش کمآبیاری، محتوای نسبیآب برگ و محتوای کلروفیل کاهش یافت. درصد نشتیونی، فعالیت آنزیم پراکسیداز و تجمع پرولین در پاسخ به افزایش تنش کمآبیاری به طور معنیداری افزایش یافت، ولی بین تیمار آبیاری 100 درصد و 70 درصد تفاوت معنیداری مشاهده نشد. در تیمار کم آبیاری 70 درصد، اگرچه عملکرد میوه 5/15 درصد کاهش یافت ولی در مصرف آب 30 درصد صرفهجویی شد و کارآیی مصرف آب 8/16 درصد افزایش یافت. بنابراین در شرایط کمبود آب آبیاری، توصیه میشود که گیاهان هندوانه ابوجهل با 70 درصد نیاز آبی گیاه آبیاری شود زیرا علاوه بر تولید عملکرد نسبتاً مشابه آبیاری 100 درصد، در مصرف آب صرفهجویی زیادی میشود.
https://jci.ut.ac.ir/article_67065_6a868f8820dd5e0a6b7116c603d27d0f.pdf
2018-07-23
357
369
10.22059/jci.2018.225366.1641
پرولین
سطح برگ
عملکرد میوه
کارایی مصرف آب
هدایت روزنه ای
جاسم
پرخیده
kabijasem@yahoo.com
1
دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زنجان، زنجان، ایران
AUTHOR
طاهر
برزگر
tbarzegar@znu.ac.ir
2
استادیار، گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زنجان، زنجان، ایران
LEAD_AUTHOR
فاطمه
نکونام
f.nekonam@gmail.com
3
دانش آموخته دکتری، گروه علوم باغبانی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج، ایران.
AUTHOR
جعفر
نیکبخت
nikbakht.jaefar@znu.ac.ir
4
دانشیار، گروه مهندسی آب، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زنجان، زنجان، ایران
AUTHOR
برزگر ط، دلشاد م، مجدآبادی ع، کاشی ع و قشقایی ژ (1390) اثر تنش کمآبی بر رشد، عملکرد و برخی شاخصهای فیزیولوژیکی خربزه ایرانی. مجله علوم باغبانی ایران. 42 (4): 357-363.
1
زینلی ن، دلشاد م، کاشی ع و حق بین ک (1391) اثر تنش کمآبی بر عملکرد و برخی خصوصیات کیفی سه ژنوتیپ دستنبو و طالبی ایران. مجله علوم باغبانی. 43 (4): 403-410.
2
محمودنیا-میمند م، فارسی م، مرعشی ح و عبادی پ (1391) بررسی پاسخهای فیزیولوژیکی چهار گونه گوجهفرنگی به تنش خشکی. مجله علوم باغبانی. 26(4): 409-416.
3
وزیری ژ، سلامت ع، انصاری م، مسچی م، حیدری ن و دهقانیسانیچ ح (1387) تبخیر-تعرق گیاهان (دستورالعمل محاسبه آب مورد نیاز گیاهان) (ترجمه). انتشارات کمیته ملی آبیاری و زهکشی ایران، چاپ اول، تهران.
4
لطفی ه، برزگر ط و ربیعی و (1395) اثر تنش کمآبی بر عملکرد، شاخصهای فیزیولوژی و بیوشیمیایی دو توده طالبی بومی ایران. زیستشناسی گیاهی ایران. 8 (28): 1-14.
5
Abdul Jaleel C, Manivannan P, Wahid A, Farooq, Somasundaram R and Panneerselvam (2009) Drought stress in plants. A review on morphological characteristics and pigments composition. International Journal of Agriculture and Biology. 11: 100-105
6
Apel Kand Hirt H (2004) Reactive oxygen species: metabolism, oxidative stress, and signal transduction. Plant Biology. 55: 373-399.
7
Arnon AN (1967) Method of extraction of chlorophyll in the plants. Agronomy Journal. 23: 112-121.
8
Aydin A, Kant C and Turan M (2012) Humic acid application alleviate salinity stress of bean (Phaseolus vulgaris L.) plants decreasing membrane leakage. African Journal of Agricultural Research. 7(7): 1073-1086.
9
Bates LW, Aldren RPand Teare ID (1973) Rapid determination of free proline for water stress studies. Plant and Soil. 39: 205-207.
10
Ben Hamed K, Castagna A, Salem E, Ranieri A, Abdelly C (2007) Sea fennel (Crithmum maritimum L.) under salinity conditions: a comparison of leaf and root antioxidant responses. Plant Growth Regulators. 53: 185-194.
11
Bybordi A (2012) Study effect of salinity on some physiologic and morphologic properties of two grape cultivars. Life Science Journal. 9(4): 1092-1101.
12
Cabello MJ, Castellanos MT, Romojaro F, Martinez-Madrid Cand Ribas F (2009) Yield and quality of melon grown under different irrigation and nitrogen rates. Agricultural Water Management. 96: 866-874.
13
Castilla Nand Lopez-Galvez J (1994) Vegetable crop responses in improved low-cost plastic greenhouses. Journal of Horticulture Science. 69: 915-921.
14
15.Chance Band Maehly AC (1955) Assay of catalase and peroxidases. Methods in Enzymology. 2: 764-775.
15
Dane F, Liu Jand Zhang C (2006) Phylogeography of the bitter apple (Citrullus colocynthis). Genetic ResourcesandCrop Evolution. 54: 327-336.
16
Dat J, Vandenabeele S, Vranova' E, Van Montagu M, Inze' Dand Van Breusegem F (2000) Dual action of active oxygen species during plant stress responses. Cellular and Molecular Life Science. 57: 779-795.
17
Dodd AN, Salathia N, Hall A, Kévei E, Tóth R, Nagy F, Hibberd JM, Millar AJand Webb AA (2005) Plant circadian clocks increase photosynthesis, growth, survival, and competitive advantage. Science. 309(5734): 630-633.
18
Fabeiro C, Martin de Santa Olalla Fand De Juan JA (2002) Production of muskmelon (Cucumis melo L.) under controlled deficit irrigation in a semi-arid climate. Agricultural Water Management. 54:93-105.
19
Farooq M, Somasundaram Rand Panneerselvam R (2012) Drought stress in plants: a review on morphological characteristics and pigments composition. International Journal of Agricultural and Biological Engineering. 11: 100-105.
20
Ferus P, Ferus Ova Sand Kona J (2011) Water dynamics and productivity in dehydrated watermelon plants as modified by red polyethylene mulch. Turkish Journal of Agriculture and Forestry. 35: 391-402.
21
Foyer CHand Noctor G (2005). Oxidant and antioxidant signaling in plants: a reevaluation of the concept of oxidative stress in a physiological context. Plant, CellandEnvironment. 28: 1056-1071.
22
Guo Z, Ou W, Lu Sand Zhong Q (2006) Deferential response of antioxidative system to chilling and drought in four rice cultivars differing in sensitivity. Plant Physiology and Biochemistry. 44: 828-836.
23
Hanson ADand Hitz WD (1982) Metabolic responses of mesophytes to plant water deficits. Annual Review of Plant Biology. 33: 163-203.
24
Inze Dand Van Montagu M (1995) Oxidative stress in plants. Current Opinion in Biotechnology. 6: 153-158.
25
Jeffries P, Gianinazi S, perotto S, Turnau Kand J M Barea (2003) The contribution of Arbuscular mycorrhizal fungi in sustainable maintenance of plant health and soil fertility. Biology Fertility Soils. 37: 1-16.
26
Kavas M, Cengiz Mand Akca O (2013) Effect of drought stress on oxidative damage and antioxidant enzyme activity in melon seedlings'. Turkish Journal of Biology. 37: 491-498.
27
Keyvan S (2010) The effects of drought stress on yield, relative water content, proline, soluble carbohydrates and chlorophyll of bread wheat cultivars. Journal of Animal and Plant Sciences. 8 (3): 1051-1060
28
Kusvuran S, Dasgan HYand Abak K (2011) Responses of different melon genotypes to drought stress. Journal of Agriculture Science. 21: 209-219.
29
Leskovar DI, Bang H, Crosby KM, Maness N, Franco JAand P Perkins-Veazie (2004) Lycopene, carbohydrates, ascorbic acid and yield components of diploid and triploid watermelon cultivars are affected by deficit irrigation. Journal of Horticultural Science and Biotechnology.79: 75-81.
30
Lu C, Zhang J (1999) Effects of water stress on photosystem II photochemistry and its thermos stability in wheat plants. Journal of Experimental Botany. 50: 107-153.
31
Madhava Roa KV, Raghavendra ASand Janardhan Reddy K (2006) Physiology and molecular biology of stress tolerance in plants. Springer, printed in Netherland. 15-39.
32
Margarita M, Crosby KMand Eliezer S (2002) Differential gene expression analysis in melon roots under drought stress conditions. Subtropical Plant Science. 54: 6-10.
33
Mohammadzade Zand Soltani F (2015) Morphological and physiological response of two accessions of Citrullus colocynthis to drought stress induced by polyethylene glycol. Iranian Journal of Plant Physiology. 5(3): 1361-1371.
34
Nayyar Hand Gupta D (2006) Differential sensitivity of C3 and C4 plants to water deficit stress: association with oxidative stress and antioxidants. Environmental and Experimental Botany. 58: 106-113.
35
Petridis A, Therios I, Samouris G, Koundouras Sand Giannakoula A (2012) Effect of water deficit on leaf phenolic composition, gas exchange, oxidative damage and antioxidant activity of four Greek olive (Olea europaea L.) cultivars. Plant Physiology and Biochemistry. 60: 1-11.
36
Rouphael Y, Cardarelli M, Colla Gand Rea E (2008) Yield, mineral composition, water relations, and water use efficiency of grafted mini watermelon plants under deficit irrigation. Horticultural Science. 43: 730-736.
37
Sarker BC, Hara Mand Uemura M (2004) Proline synthesis, physiological responses and biomass yield of eggplants during and after repetitive soil moisture stress. Horticultural Science. 103: 387-402.
38
Sensory S, Ertek A, Gedik I and Kucukyumuk C (2007) Irrigation frequency and amount affect yield and quality of field grown melon (Cucumis melo L.). Agricultural Water Management. 88: 269-274.
39
Shao HB,Chu LY, Jaleel CA and Zhao CX (2008) Water-deficit stress induced anatomical changes in higher plants. Comptes Rendus Biologies. 331: 215-225.
40
Sharma SP, Leskovar DI, Crosby KM, Volder A and Ibrahim AMH (2014) Root growth, yield, and fruit quality responses of reticulatus and inodorus melons (Cucumis melo L.) to deficit subsurface drip irrigation. Agricultural Water Management. 136: 75-85.
41
Shishido Y, Yahashi T, Seyama N and Imada S (1992) Effects of leaf position and water management on translocation and distribution of 14C assimilates in fruiting muskmelons. Journal of the Japanese Society for Horticultural Sciences. 60: 897-903.
42
Siddique MRB, Hamid A and Islam MS (2000) Drought stress effects on water relations of wheat. Botanical bulletin of Academia Sinica. 41: 25-39.
43
Wang H, Siopongco J, Wade LJ, Yamauchi A (2009) Fractal analysis on root systems of rice plants in response to drought stress. Environmental and Experimental Botany. 65(2): 338-344.
44
Zulu NS (2009) Wild watermelon (Citrullus lanatus L.) landrace production in response to three seedling growth media and field planting dates. M.Sc. thesis. Faculty of Agriculture KwaZulu-Nata University, Pietermaritzburg.
45
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی واکنشهای بیوشیمیایی رقمهای بادام ’شاهرود 12‘، ’تونو‘ و ژنوتیپ ’16-1‘ پیوند شده روی پایه GF677 تحت تنش شوری
ترکیب پایه و پیوندک و سطح شوری میتواند واکنشهای بیوشیمیایی بادام را در شرایط تنش شوری تحت تأثیر قرار دهد. به منظور ارزیابی اثر تنش شوری بر تغییرات بیوشیمیایی تعدادی از ژنوتیپهای بادام، آزمایشی با دو عامل ژنوتیپ در 4 سطح (’شاهرود 12‘، ’تونو‘ و ژنوتیپ’16-1‘ پیوند شده روی پایه GF677 و پایه GF677 (بدون پیوند)) و شوری آب آبیاری در پنج سطح (غلظتهای 0، 2/1، 4/2، 6/3 و 8/4 گرم در لیتر کلرید سدیم به ترتیب با هدایت الکتریکی 5/0، 5/2، 9/4، 3/7 و 8/9 دسیزیمنس بر متر)، انجام شد. نتایج نشان داد، محتوی پراکسید هیدروژن، مالون دیآلدئید و سایر آلدئیدها، با افزایش غلظت نمک تا سطح شوری 8/4 گرم در لیتر در تمامی ژنوتیپهای مطالعه شده، افزایش یافتند. محتوی فنل کل، ظرفیت آنتی اکسیدانی، قندهای محلول، پرولین، پروتئین محلول کل، فعالیت آنزیمهای کاتالاز، گایاکول پراکسیداز و آسکوربات پراکسیداز در تمامی ژنوتیپهای مطالعه شده، ابتدا با افزایش غلظت نمک، افزایش و سپس با افزایش بیشتر سطح شوری، مقدار آنها کاهش یافت. در مجموع، بیشترین محتوی پروتئین محلول کل، فعالیت آنزیمهای کاتالاز، گایاکول پراکسیداز و آسکوربات پراکسیداز در سطح شوری 6/3 گرم در لیتر و بیشترین محتوی فنل کل، ظرفیت آنتی اکسیدانی، قندهای محلول و پرولین در سطح شوری 8/4 گرم در لیتر و کمترین محتوی پراکسید هیدروژن، مالون دیآلدئید، سایر آلدئیدها و قندهای نامحلول در دو سطوح شوری 6/3 و 8/4 گرم در لیتر در رقم ’شاهرود 12‘، مشاهده شد. از میان ژنوتیپهای مورد مطالعه، رقم ’شاهرود 12‘، به عنوان متحملترین رقم به شوری تشخیص داده شد.
https://jci.ut.ac.ir/article_67161_44017820d6f9cff800ecb2f4c879eb7a.pdf
2018-07-23
371
381
10.22059/jci.2018.235780.1760
بادام
تنش شوری
پرولین
قندهای محلول و نامحلول
آنزیمهای کاتالاز و پراکسیداز
علی
مومن پور
alimomenpour2005@gmail.com
1
استادیار مرکز ملی تحقیقات شوری، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، یزد، ایران.
LEAD_AUTHOR
داود
بخشی
bakhshi-d@guilan.ac.ir
2
دانشیار گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه گیلان، رشت، ایران.
AUTHOR
علی
ایمانی
imani_a45@yahoo.com
3
استادیار، موسسه تحقیقات اصلاح و تهیه نهال و بذر، اصلاح درختان میوه، میوه های معتدله
AUTHOR
اورعی م، طباطبایی ج، فلاحی ا و ایمانی ع ( 1388). اثرات تنش شوری و پایه بر رشد، شدت فتوسنتز، غلظت عناصر غذایی و سدیم درخت بادام. علوم باغبانی ایران. 23 (2): 140-131
1
حیدری شریف آباد ح (1380). گیاه و شوری. موسسه تحقیقات جنگلها و مراتع. 76 صفحه.
2
رهنمون ح، شکاری ف، دژم پور ج و خورشیدی م ب (1392). تأثیر سطوح مختلف شوری روی برخی تغییرات مورفولوژیکی و بیوشیمیایی بادام (Prunus dulcis Mill.). بهزراعی کشاورزی. 15 (2):192-179.
3
رهنمون ح، قاسیموف نعمت ع، شکاری ف و علی اصغرزاده ن (1388). تاثیر تنش شوری روی برخی رفتارهای اکوفیزیولوژیکی نژادگانهای گزینششده بادام (Prunus amygdalus B.). علوم و فنون باغبانی ایران. 10 (2): 167-176.
4
علایی ش و تفضلی ع (1382). اثر های شوری کلرید سدیم, کینتین و سایکوسل بر تجمع برخی از عناصر در زیتون (Olea europea L.) رقم دزفول. علوم و فنون باغبانی ایران. 4 (1 و 2): 10-1.
5
غلامی، م و راحمی م (1389). بررسی اثرات تنش شوری کلرید سدیم بر خصوصیات فیزیولوژیکی و مورفولوژیکی پایه رویشی هیبرید هلو- بادام ((GF677. فناوری تولیدات گیاهی. 2 (1): 31-21.
6
مومن پور ع، ایمانی ع، بخشی د و رضایی ح (1393). ارزیابی تحمل به شوری در برخی از ژنوتیپ های بادام پیوند شده روی پایه GF677 بر اساس صفات مورفولوژیک و فلورسانس کلروفیل. فرآیند و کارکرد گیاهی. 3 (10): 28-9
7
مؤمن پور ع، بخشی د، ایمانی ع و رضایی ح (1394). ارزیابی خصوصیات رشدی و غلظت عناصر غذایی در چهار ژنوتیپ بادام پیوندشده روی پایه GF677 تحت تنش شوری. علوم باغبانی ایران. 64 (3):624-603.
8
مومن پور ع، بخشی د، ایمانی ع و رضایی ح (1394). اثر تنش شوری بر خصوصیات رشدی و غلظت عناصر غذایی در رقمهای بادام ’شاهرود 12‘، ’تونو‘ و ژنوتیپ ’16-1‘ پیوندشده روی پایه GF677. بهزراعی کشاورزی. 17 (1): 216-197.
9
میرمحمدی میبدی س ع و قره یاضی ب (1381). جنبههای فیزیولوژیک و بهنژادی تنش شوری گیاهان. انتشارات دانشگاه صنعتی اصفهان. 274 صفحه.
10
Ashraf M and Harris PJC )2003). Potential biochemical indicators of salinity tolerance in plants. Plant Science. 166: 3-16.
11
Bakhshi D and Arakawa O (2006). Effects of UV-B irradiation on phenolic compound accumulation and antioxidant activity in ‘Jonathan’ apple influenced by bagging, temperature and maturation. Food, Agriculture and Environment. 4 (1): 75-79.
12
Bartles D and Sunkar R )2005) Drought and salt tolerance in plants: a review. Plant Science. 24: 23-58.
13
Bates LS, Waldren RP and Teare LD (1973). Rapid determination of free proline for water stress studies. Plant and Soil Science. 39: 205-208.
14
Beauchamp CO and Fridovich I (1971). Superoxide dismutase: improved assays and an assay applicable to acrylamide gels. Annual Review of Biochemistry. 44: 276-287.
15
Bradford MM )1976) A rapid and sensitive method for the quantization of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Annual Review of Biochemistry. 72: 248-254.
16
Cesarino IA, Araújo P, Sampaio M JL, Paes LAF and Mazzafera P (2012) Enzymatic activity and proteomic profile of class III peroxidases during sugarcane stem development. Plant Physiology and Biochemistry. 55: 66-76.
17
Chance B and Maehly AC (1955) Assay of catalases and peroxidase. In: Colowickand SP and Kaplan NO (Eds.), Methods inEnzymology. New York Academic Press, pp. 764-775.
18
Du G, Li F, Ma F and Liang D (2009) Antioxidant capacity and the relationship with polyphenol and Vitamin C in Actinidia fruits. Food Chemistry. 113: 557-562.
19
Erturk U, Sivritepe N, Yerlikaya C, Bor M, Ozdemir F and Turkan I )2007) Responses of the cherry rootstock to salinity in vitro. Biologia Plantarum. 51: 597-600.
20
Grattan SR (2002) Irrigation water salinity and crop production. University of California. Agriculture and Natural Recourses Publication. 8066.
21
Heath RL and Packer L (1969). Photoperoxidation in isolated chloroplast, I. Kinetics and stoichiometry of fatty acid peroxidation. Archives of Biochemistry and Biophysics. 125: 189-198.
22
Karamanos AJ )1995) The involvement of Proline and some metabolites in water stress and their importance as drought resistance indicators. Plant Physiology. 21(2-3): 98-110.
23
Kochert G )1987) Carbohydrate determination by the phenolsulfuric acid method. in Helebus Cambrige Univ. Press, Cambridge.
24
Levitt J )1980) Responses of plants to environmental stresses: water, radiation, salt and other stresses. Vol. II. Academic Press, New York.
25
Maas EV and Hoffman GJ (1977) Crop salt tolerance: current assessment. Journal of Irrigation and Drainage Engineering. 103: 115- 134.
26
Mahajan Sh and Tuteja N )2005) Cold, salinity and drought stresses: An overview. Archives of Biochemistry and Biophysics. 444: 139-158.
27
Montaium R, Hening H and Brown PH (1994) The relative tolerance of six Prunus rootstocks to boron and salinity. American Society for Horticultural Science. 6: 1169-1175.
28
Mousavi A, Lessani H, Babalar MA, Talaei R and Fallahi E (2008) Influence of salinity on chlorophyll, leaf water potential, total soluble sugars and mineral nutrients in two young olive plants. Plant Nutrition. 31(11): 1906-1916.
29
Munns R and Tester M (2008) Mechanisms of salinity tolerance. Annual Review of Plant Biology. 59: 651-681.
30
Nakano Y and Asada K )1981) Hydrogen peroxide is scavenged by ascorbate-specific peroxidase in spinach chloroplast. Plant Cell and Environment. 22: 867-880.
31
Singleton VL, Orthofer R, and Lamuela-Raventos R (1999) Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of Folin-Ciocalteu reagent. Methods in Enzymology. 299: 152-178.
32
Sorkheh K, Shiran B, Rouhi V and Khodambashi M (2012). Salt stress induction of some key antioxidant enzymes and metabolites in eight Iranian wild almond species. Plant Physiology. 34: 203-213.
33
akeda T, Yokota A and Shigeoka S (1995) Resistance of photosynthesis to hydrogen peroxide in algae. Plant Cell Physiology. 36: 1089-1095.
34
Velikova V, Yordanov I and Edreva A (2000) Oxidative stress and some antioxidant systems in acid rain-treated bean plants. Plant Science. 151: 59-66.
35
Vogt T (2010) Phenyl propanoid biosynthesis. Molecular Plant. 3: 2-20.
36
Zhang J and Kirkham MB (1996) Enzymatic responses of the acrobat-glutathione cycle to drought in sorghum and sunflower. Plant Science. 113: 139-147.
37
ORIGINAL_ARTICLE
اثر مرحله برداشت و مدت زمان انبارمانی بر کیفیت میوه عروسک پشتپرده
بهمنظور ارزیابی اثرات زمان برداشت و مدت انبارمانی بر شاخصهای کیفی و عمر انبارمانی میوه عروسک پشت پرده، آزمایشی بهصورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی در سه تکرار در سال 1395 انجام شد. برگ خریدهای آزمایش شامل زمان برداشت میوه در سه مرحله (سبز بالغ، سبز مایل به زرد و زردرنگ) و مدتزمان انبارمانی (صفر، 10، 20 و 30 روز پس از برداشت) بود. نتایج نشان داد که زمانهای مختلف برداشت میوه و مدت انبارمانی تأثیر معنیداری بر شاخصهای کیفی میوه و عمر انبارمانی میوه داشت. بیشترین شاخص طعم و رنگ میوه، میزان ویتامین ث (54/201 میلیگرم) و مواد جامد محلول (6/7 درصد بریکس) در میوههای برداشتشده در مرحله زردرنگ در 10 روز بعد از انبارمانی مشاهده شد، با طولانی شدن دوره انبارمانی میزان ویتامین ث و مواد جامد محلول کاهش یافت. حداکثر مقدار اسید قابل تیتراسیون (71/1 میلیگرم در 100 گرم) و خاصیت اسیدیته در میوههای سبزرنگ در زمان برداشت بهدست آمده آمد. نمودار اختلاف رنگ طی انبارمانی با روندی صعودی همراه بود که این میزان در میوههای سبز بالغ دارای اختلاف معنیداری نسبت به میوههای سبز مایل به زرد و زردرنگ بود. با توجه به نتایج، به دلیل فراز گرا بودن میوههای عروسک پشت پرده و رسیدن تدریجی و تغییر رنگ میوهها، برداشت میوه در مرحله سبز بالغ، مدت انبارمانی را در دمای 15 درجه سانتیگراد نسبت به میوههای برداشتشده در زمانهای دیگر تا 30 روز افزایش داد.
https://jci.ut.ac.ir/article_67162_c36b65b0135988dd113ab819852d0315.pdf
2018-07-23
383
395
10.22059/jci.2018.236420.1773
رسیدن میوه
رنگسنجی
کلروفیل
کیفیت میوه
ویتامین ث
رسول
حیدرنژاد گیگلو
rasol.heydarnazhad@gmail.com
1
دانشجوی دکتری، گروه علوم باغبانی، دانشگاه محقق اردبیلی، پارس آباد، ایران
AUTHOR
زهرا
قهرمانی
z.ghahremani@znu.ac.ir
2
استادیار، گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زنجان، زنجان، ایران
LEAD_AUTHOR
طاهر
برزگر
tbarzegar@znu.ac.ir
3
استادیار، گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زنجان، زنجان، ایران
AUTHOR
ولی
ربیعی
rabiei@znu.ac.ir
4
دانشیار، گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زنجان، زنجان، ایران
AUTHOR
راحمی م (1384) فیزیولوژی پس از برداشت (معرفی فیزیولوژی و مدیریت مواد مغذی و میوهها و گیاهان زینتی). ویرایش سوم. دانشگاه شیراز. شیراز.
1
مناف دلستان ف و اسمعیلی م (۱۳۹۲) ارزیابی شاخصهای رنگ میوه گیلاس واریته سیاه مشهد طی دوره رسیدن، دومین همایش ملی علوم و صنایع غذایی، قوچان، دانشگاه آزاد اسلامی واحد قوچان.
2
نجاتیان م ع (1386) بررسی راهکارهای افزایش عمر انبارمانی و کاهش ضایعات بعضی ارقام انگور ایران، مجله تحقیقات مهندسی کشاورزی. 8: 31-50.
3
Amodio ML, Colelli G, Hasey JK and Kader A (2007) A comparative study of composition and postharvest performance of organically and conventionally grown kiwifruits. Journal of the Science of Food and Agriculture. 87: 1228-1236.
4
Andrade L (2008) Physalis ou uchuva: fruta da Colombia chega ao Brasil. Revista Rural, São Paulo. 38: 11-12.
5
Arnon AN (1967) Method of extraction of chlorophyll in the plants. Agronomy Journal. 23: 112-121.
6
Avila AJ (2006) Influencia de la madurez del fruto y del secado del cáliz en uchuva Physalis peruviana L., almacenada a 18ºC. Acta Agronómica Colombiana, Bogotá. 55(4): 29-38.
7
Arena E, Fallico A and Maccarone E (2001) Evalution of antioxidant capacity of blood orange juice as influenced by constituents concentrate. Food Chemistry. 74: 423-427.
8
Arya SPN (2000) Spectrophotometric methods for the determination of vitamin C. Analytica Chimica Acta. 417: 1-14.
9
Ayala-Zavala JF, Wang SY and Wang CY (2004) Effect of storage temperature on antioxidant capacity and aroma compounds in strawberry fruit. Lebensm-Wiss. Food Science and Technology. 37: 687-695.
10
Ayala-Zavala JS, Wang C and González-Aguilar G (2007) High oxygen treatment increases antioxidant capacity and postharvest life of strawberry fruit. Food Technology and Biotechnology. 452: 166-173.
11
Barreiro J, Milano M and Sandoval A (1997) Kinetics of color change of double concentrated tomato paste during thermal treatment. Journal of Food Engineering. 33(3-4): 359-371.
12
Ball JA (1997) Evaluation of two lipid-based edible coatings for their ability to preserved postharvest quality of green bell peppers. M.Sc. thesis, Faculty of the Virginia Polytechnic Institute and State University, Blacksburg, Virginia, USA.
13
Betancourt LA, Stevens MA and Kader AA (1977) Accumulation and loss of sugars and reduced ascorbic acid in attached and detached tomato fruits. Journal of the American Society for Horticultural Science. 102: 721-723.
14
Chitarra MI (2005) Pós-colheita de frutos e hortaliças: fisiologia e manuseio. 2. Ed Lavras: UFLa.
15
Dissa AO, Desmorieux H, Bathiebo J and Koulidiati J (2008) Convective drying characteristics of Amelie mango (Mangifera indica L. cv. ‘Amelie’) with correction for shrinkage. Journal of Food Engineering. 88: 429-437.
16
Fischer G and Martinez O (1999) Calidad y madurez de la uchuva (Physalis peruviana L.) en relación com la coloración del fruto. Agronomía Colombiana, Bogotá. 16(1): 35-39.
17
Gao Y Ma Y, Li M, Cheng T, Li SW, Zhang J and Xia NS (2003) Oral immunization of animals with transgenic cherry tomatillo expressing HBsAg. World Journal of Gastroenterol. 9(5): 996-1002.
18
Getinet H, Seyoum T and Woldetsadik K (2008) The effect of cultivar, maturity stage and storage environment on quality of tomatoes. Journal of Food Engineering. 87: 467-478.
19
Haard FN (1993) Características de los tejidos vegetales comestibles. In: Fennema OR, (Eds.). Química de los Alimentos. 2nd ed. Zaragoza: Acribia. 961-1024.
20
Hancock JF (1999) Strawberries. CAB. Pub., UK.
21
Hernandez-Munoz G, Almenar E, Del Valle V, Velez D and Gavara R (2008) Effect of chitosan coating combined with postharvest calcium treatment on strawberry (Fragaria × ananassa) quality during refrigerated storage. Food Chemistry. 110: 428-435.
22
Hernandez N (2012) Information and statistics of agricultural and animal products. Ministry of Agricultural. Available online at. 9(1): 39-45.
23
Jin ZT and Gurtler J (2012) Inactivation of Salmonella on tomato stem scars by edible chitosan and organic acid coatings. Journal of Food Protection. 10: 12-21.
24
Julia F Morton (2010) Fruits of Warm Climates Center for New Crops and Plant Products Purdue University Department of Horticulture and Landscape Architecture 625 Agriculture Mall Drive West Lafayette, IN 47907.
25
Koca N, Karadeniz F and Burdurlu HS (2006) Effect of pH on chlorophyll degradation and color loss in blanched green peas. Journal of Food Chemistry. 100: 609-615.
26
Knee M and Finger FL (1992) NADP+-malic enzyme and organic acid levels in developing tomato fruits. Journal of the American Society for Horticultural Science. 117: 799-801
27
Ladaniya MS (2003) Citrus Postharvest cold chain. In Dris R., R. Niskanen and S.M. Jain (Eds). Crop management and postharvest handling or horticultural products. Volum II, Fruits vegetables. Science publisher, pp.593.
28
Lo Piero AR, Puglisi I, Rapisarda P and Petrone G (2005) Anthocyanins accumulation and related gene expression in red orange fruit induced by low temperature. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 53: 9083-9088.
29
Martinez GA, Civello PM, Chaves AR and Anon MC (2001) Characterization of peroxidase mediated chlorophyll bleaching in strawberry fruit. Phytochemical. 58: 379-387.
30
Martins RC and Silva CL (2002) Modeling color and chlorophyll losses of frozen green beans (Phaseolus vulgaris L.) International Journal of Refrigeration. 25(7): 966-974.
31
Pietro RC, Kashima S, Sato DN, Januario AH and Franca SC (2000) In vitro antimycobacterial activities of Physalis angulata L. Phytomedicine. 7(4): 335-338.
32
Rapisarda P, Lo Bianco M., Pannuzzo P and Timpanaro N (2008) Effect of cold storage on vitamin C, phenolic and antioxidant activity of five orang genotype (Citrus sinensis L. osbeck). Postharvest Biology and Technology. 49: 346-354.
33
Rodrigues FA (2012) Caracterização do ponto de colheita de Physalis peruviana L. na região de Lavras, MG. Bioscience Journal, Uberlândia. 28(6): 862- 867.
34
Rufato L (2008) Aspectos técnicos da cultura da physalis. Lages: CAV/UDESC. 34: 23-31.
35
Sahin S and Sumnu SG (2006) Physical properties of foods. NewYork: Springer. 250: 1-38.
36
Saltveit ME (2005) Postharvest biology and handling, In: Heuvelink, E. (Ed.), Tomatoes. CAB International, Wallingford. pp. 305-324.
37
Serrano M, Martinez-Romero D, Guillen F, Castillo S and Valero D (2006) Maintenance of broccoli quality and functional properties during cold storage as affected by modified atmosphere packaging. Postharvest Biology and Technology. 39: 61-68.
38
Shang D, Zhang L, Han S and Wang G (2011) Adjuvant effect of a novelwater-soluble polysaccharide isolated from the stem of Physalis alkekengi L. var. francheti (Mast). Journal of Medicinal Plants Research. 5(16): 3814-3818.
39
Shewfelt RA, Bart Z and Brecht J (2003) Postharvest physiology and pathology of vegetables New York: Marcel Dekker. (pp. 287-296).
40
Tavarini S, Remorini D and Massai R (2007) Antioxidant capacity, ascorbic acid, total phenols and carotenoids change during harvest and after storage of Hayward kiwifruit. Food Chemistry. 107: 282-288.
41
Wills RBH and Ku VVV (2002) Use of 1- MCP to extend the time to ripen of green tomatoes and postharvest life of ripe tomatoes. Postharvest Biology and Technology. 26: 85-90.
42
Toor R and Kand Savage GP (2006) Changes in major antioxidant components of tomatoes during post-harvest storage. Food Chemistry. 99: 724-727.
43
Wills RB, Mc Glasson D, Graham and Joyce D (1998) Postharvest: An Introduction to the Physiology and Handling of Fruit, Vegetables and Ornamentals. 4th ed., Hyde Park Press, Australia. 33-264.
44
Zhang YL and Zhang RG (2008) Study on the mechanism of Browning of pomegranate (Punica granatum L. cv. Ganesh) peel in different storage conditions. Agricultural Sciences in China. 7(1): 65-73.
45
ORIGINAL_ARTICLE
مستندسازی فرآیند تولید و برآورد خلاء عملکرد مرتبط با مدیریت زراعی در برنج (مطالعه موردی: استان مازندران - منطقه بابل)
مستندسازی فرآیند تولید در کشاورزی شامل تهیه کلیه اطلاعات و فعالیتهایی است که سیر تولید یک محصول از مرحله تهیه بستر بذر تا برداشت را نشان میدهد. به این منظور در این پژوهش کلیه عملیاتهای مدیریتی انجام شده از مرحله تهیه بستر بذر تا برداشت برای ارقام محلی برنج از طریق مطالعات میدانی در منطقه بابل واقع در استان مازندران طی سالهای 1394 و 1395 ثبت شد. نتایج نشان داد که از حدود 155 متغیر مورد بررسی، مدل نهایی با شش متغیر مستقل انتخاب شد. در مدل عملکرد، متوسط و حداکثر عملکرد بهترتیب 4572 و 6489 کیلوگرم در هکتار تخمین زده شد که با متوسط و حداکثر عملکرد مشاهده شده (4512 و 6100 کیلوگرم در هکتار) قابل مقایسه هستند. کل خلاء عملکرد تخمین زده شده برابر 1977 کیلوگرم در هکتار بود. میزان افزایش عملکرد ناشی از تفاضل عملکرد حالت بهترین و متوسط دو متغیر مشکل آفات و مشکل علف هرز بهترتیب برابر هفت و سه درصد از کل افزایش عملکرد (140 و 59 کیلوگرم در هکتار) بود. میزان افزایش عملکرد مربوط به متغیر آیش برابر 62 کیلوگرم در هکتار معادل سه درصد از کل افزایش عملکرد بود. بنابراین، بر اساس یافتهها میتوان بیان کرد که دقت مدل (معادله تولید) مناسب بوده و میتواند برای برآورد میزان خلاء عملکرد و تعیین سهم هر یک از متغیرهای محدودیت کننده عملکرد به کار گرفته شود.
https://jci.ut.ac.ir/article_67068_549bb92da709a5ab26b01a7f296fdf69.pdf
2018-07-23
397
414
10.22059/jci.2018.237805.1795
برنج
پتانسیل عملکرد
خلاء عملکرد
مدیریت مزرعه
مستندسازی
سیف اله
حلالخور
s_halalkhor@yahoo.com
1
دانشجوی دکتری، گروه زراعت دانشگاه آزاد اسلامی، واحد گرگان، گرگان، ایران.
AUTHOR
سلمان
دستان
salmandastan@ymail.com
2
پژوهشگر پسادکتری، پژوهشگاه بیوتکنولوژی کشاورزی ایران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
افشین
سلطانی
afsoltani@yahoo.com
3
استاد، گروه زراعت، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
حسین
عجم نوروزی
ajamnorozei@yahoo.com
4
استادیار، گروه زراعت دانشگاه آزاد اسلامی، واحد گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
آقاگلزاده ح (1389) راهنمای برداشت و پس از برداشت برنج. سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، معاونت ترویج و آموزش، نشر آموزش کشاورزی. 220 ص.
1
امیری لاریجانی ب (1389) راهنمای برنج (آمادهسازی و کاشت)، جلد 1. سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، معاونت ترویج و آموزش، نشر آموزش کشاورزی. 179 ص.
2
امیری لاریجانی ب، آقاگلزاده ح و رمضانپور ی (1389) راهنمای برنج (آمادهسازی و کاشت)، جلد 2. سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، معاونت ترویج و آموزش، نشر آموزش کشاورزی. 170 ص.
3
ترابی ب، سلطانی ا، گالشی س، زینلی ا و کاظمی کرگهی م (1392) الویتبندی عوامل ایجادکننده خلأ عملکرد گندم در منطقه گرگان. نشریه تولید گیاهان زراعی. 6(1): 171-189.
4
ترابی ب، سلطانی ا، گالشی س و زینلی ا (1391) مستندسازی فرایند تولید گندم در گرگان. مجله پژوهشهای تولید گیاهی. 19: 19-42.
5
دستان س، نورمحمدی ق، مدنی ح، سلطانی ا و یدی ر (1394) تجزیه و تحلیل شاخصهای انرژی در نظامهای تولید برنج در منطقه نکا. مجله علوم محیطی. 13(1): 53-66.
6
زارعی ب و زارعی ا (1383) گسترش فرایند مستندسازی در بخش دولتی: تهیه استراتژی. مجله مهندسی معدن. 8: 15-30.
7
سلطانی ا و مداح و (1389) برنامههای کاربردی ساده برای آموزش و پژوهش در زراعت. انتشارات انجمن علمی بومشناختی دانشگاه شهید بهشتی. 80 ص.
8
مجیدی ف و پاداشت ف (1389) راهنمای آفات و بیماریهای برنج. سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، معاونت ترویج و آموزش، نشر آموزش کشاورزی. 150 ص.
9
میرکمالی ح (1389) راهنمای علفهای هرز مزارع برنج و روشهای مبارزه. سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، معاونت ترویج و آموزش، نشر آموزش کشاورزی. 214 ص.
10
Beza E, Vasco Silva, J, Kooistra L and Reidsma P (2017) Review of yield gap explaining factors and opportunities for alternative data collection approaches. European Journal of Agronomy. 82: 206-222.
11
Delmottea S, Tittonell P, Moureta JC, Hammonda R and Lopez-Ridaura L (2011) On-farm assessment of rice yield variability and productivity gaps between organic and conventional cropping systems under Mediterranean climate. European Journal of Agronomy. 35: 223-236.
12
Espe MB, Yang H, Cassman KG, Guilpart N, Sharifi H and Linquist BA (2016a) Estimating yield potential in temperate high-yielding, direct-seeded US rice production systems. Field Crops Research. 193: 123-132.
13
Espe MB, Cassman KG, Yang H, Guilpart N, Grassini P, Van Wart J, Anders M, Beighley D, Harrell D, Linscombe S, McKenzie K, Mutters R, Wilson LT and Linquist BA (2016b) Yield gap analysis of US rice production systems shows opportunities for improvement. Field Crops Research. 196: 276-283.
14
Hochman Z, Gobbett D, Holzworth D, McClelland T, van Rees H, Marinoni O, Garcia JN, Horan H (2013) Reprint of Quantifying yield gaps in rain-fed cropping systems: A case study of wheat in Australia. Field Crops Research. 143: 65-75.
15
Kayiranga D (2006) The effects of land factors and management practices on rice yields. International Institute for Geo-Information Science and Earth Observation Enscheda (ITC). The Netherlands.72 p.
16
Liu Z, Yang X, Lin X, Hubbard KG, Lv S and Wang J (2016) Narrowing the Agronomic Yield Gaps of Maize by Improved Soil, Cultivar, and Agricultural Management Practices in Different Climate Zones of Northeast China. Earth Interactions. 20(12): 1-18.
17
Lobell DB, Cassman KG and Field CB (2009) Crop yield gaps: their importance, magnitudes, and causes. Annual Review of Environment and Resources. 34: 179-204.
18
Mueller ND, Gerber JS, Johnston M, Ray DK, Ramankutty N and Foley JA (2012) Closing yield gaps through nutrient and water management. Nature. 490: 254-257.
19
Rajapakse DC (2003) Biophysical factors defining rice yield gaps. International Institute for Geo-Information Science and Earth Observation Enschede (ITC).The Netherlands.80 p.
20
Reidsma P and Jeuffroy H (2017) Farming systems analysis and design for sustainable intensification: new methods and assessments. European Journal of Agronomy. 82: 203-205.
21
Silvaa JV, Reidsmaa P, Laborteb AG and van Ittersum MK (2017) Explaining rice yields and yield gaps in Central Luzon, Philippines: An application of stochastic frontier analysis and crop modeling. European Journal of Agronomy. 82: 223-241.
22
Soltani A, Hajjarpoor A and Vadez V (2016) Analysis of chickpea yield gap and water-limited potential yield in Iran. Field Crops Research. 185: 21-30.
23
Tanakaa A, Saitob K, Azomab K and Kobayashi K (2013) Factors affecting variation in farm yields of irrigated lowland rice in southern-central Benin. European Journal of Agronomy. 44: 46-53.
24
Tanakaa A, Diagneb M and Saito K (2015) Causes of yield stagnation in irrigated lowland rice systems in the Senegal River Valley: Application of dichotomous decision tree analysis. Field Crops Research. 176: 99-107.
25
Turner AR and Detoro IJ (2000) Process Redesign, PH.PTR, USA.
26
van Ittersum MK, Cassman KG, Grassini P, Wolf J, Tittonell P and Hochman Z (2013) Yield gap analysis with local to global relevance-A review. Field Crops Research. 143: 4-17.
27
van Wart J, Kersebaum KC, Peng S, Milner M and Cassman KG (2013) Estimating crop yield potential at regional to national scales. Field Crops Research. 143: 34-43.
28
Xua X, He P, Zhaoa S, Qiua S, Johnstond AM and Zhou W (2016) Quantification of yield gap and nutrient use efficiency of irrigated rice in China. Field Crops Research. 186: 58-65.
29
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر سیستمهای مختلف خاکورزی و انواع کود بر ویژگیهای کمی و کیفی زیره سبز
بهمنظور بررسی تأثیر سیستمهای مختلف خاکورزی و انواع کود بر ویژگیهای کمی و کیفی زیره سبز، آزمایشی بهصورت کرتهای خرد شده در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار در مزرعه تحقیقاتی شهرستان دلفان در سال زراعی 1394-95 انجام گرفت. عامل اصلی شامل سه سیستم مختلف خاکورزی؛ (1) خاکورزی متداول (گاوآهن برگرداندار، پنجهغازی و دیسک)، (2) خاکورزی حداقل (پنجهغازی و دیسک) و (3) بدون خاکورزی (دیسک) و عامل فرعی شامل کودهای آلی و شیمیایی در 8 سطح؛ (1) شاهد، (2) 25 کیلوگرم کود شیمیایی نیتروژن، (3) 10 تن ورمیکمپوست، (4) 20 تن کود گاوی، (5) 20 تن کمپوست زباله شهری، (6) 50 درصد کود شیمیایی + 50 درصد ورمیکمپوست، (7) 50 درصد کود شیمیایی + 50 درصد کود گاوی و (8) 50 درصد کود شیمیایی + 50 درصد کمپوست زباله شهری میباشد. نتایج نشان داد که بالاترین عملکرد دانه (53/81 گرم در متر مربع) و عملکرد بیولوژیک (41/210 گرم در متر مربع) مربوط به سیستم خاکورزی حداقل و مصرف کود گاوی بود و کمترین آنها نیز در سیستم بدون خاکورزی و تیمار شاهد بهدست آمد. همچنین، بیشترین درصد و عملکرد اسانس در سیستم خاکورزی حداقل و مصرف 10 تن ورمیکمپوست در هکتار بهدست آمد که نسبت به سیستم بدون خاکورزی و تیمار شاهد بهترتیب 25 و 28 درصد افزایش را نشان داد. میتوان نتیجهگیری کرد که برای افزایش و بهبود ویژگیهای کمی و کیفی زیره سبز کاربرد کود گاوی و ورمیکمپوست در قالب خاکورزی حداقل قابل توصیه است.
https://jci.ut.ac.ir/article_67069_5c20796924f3b2277f4c20c231f2a7d3.pdf
2018-07-23
415
426
10.22059/jci.2018.237843.1796
اسانس
بدون خاکورزی
کشاورزی اکولوژیک
کمپوست زباله شهری
گیاهان دارویی
قاسم
حسین طلایی
ghasem.talaei@gmail.com
1
دانشجوی دکتری، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زابل، زابل، ایران
LEAD_AUTHOR
احمد
قنبری
ghanbari@uoz.ac.ir
2
استاد، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زابل، زابل، ایران
AUTHOR
محمدرضا
اصغری پور
m_asgharipour@yahoo.com
3
دانشیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زابل، زابل، ایران.
AUTHOR
حسن
حبیبی
habibih2011@gmail.com
4
استادیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شاهد، تهران، ایران
AUTHOR
سید محسن
موسوی نیک
mohsen_372001@yahoo.com.au
5
دانشیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زابل، زابل، ایران
AUTHOR
حسین طلایی ق و امینی دهقی م (1393) تأثیر کودهای زیستی و شیمیایی بر عملکرد و اجزای عملکرد گیاه دارویی زیره سبز (Cuminum cyminum L.). تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران. 30(6): 932-942.
1
حسینپور ر، قاجار سپانلو م و سالکگیلانی م (1394) اثر کاربرد ورمیکمپوست بر غلظت عناصر ریز مغذی در خاک و گیاه کاهو (Lactuca sativa L.). به زراعی کشاورزی. 17(3): 815-826.
2
رنجبر م، قربانی ه و قاجار سپانلو (1395) تأثیر کاربرد درازمدت کمپوست زباله شهری بر غلظت عناصر پر مصرف در خاک و گیاه برنج. بهزراعی کشاورزی. 18(4): 746-753.
3
زمان س (1382) گیاهان دارویی. جلد دوم، انتشارات ققنوس تهران. 366 ص.
4
عامری ع ا و نصیری محلاتی م (1387) اثرات سطوح مختلف نیتروژن و تراکم بر میزان تولید گل مواد مؤثره و کارایی مصرف نور در گیاه دارویی همیشه بهار (Calendula officinalis L.). پژوهش و سازندگی در منابع طبیعی. 81:133-144.
5
عزیزی م، علیمرادی ل و راشد محصل م (1385) بررسی اثرات آللوپاتی اسانس Bunium persicum و Cuminum cyminum بر جوانهزنی بذرهای برخی از علفهای هرز. تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران. 22(3): 198-208.
6
Anwar M, Patra DD, Chand S, Alpesh K, Naqvi AA and Khanuja SPS (2005) Effect of organic manures and inorganic fertilizer on growth, herb and oil yield, nutrient accumulation and oil quality of French basil. Communications in Soil Science and Plant Analysis. 36(13): 1737-1746.
7
Arancon NA, Edwards P, Dierman C, Welch and Metzger JD (2004) Influences of Vermicomposts on field Strawberries: part 1. Effects on growth and yields. Bioresource Technology. 93(3): 145-153.
8
Blevins RL, Smith MS, Thomas GW and Frye WW (1983) Influence of conservation tillage on soil properties. Journal of Soil Water Conservation. 38(3): 301-305.
9
Kettler TA, Lyon DJ, Doran JW, Powers WL and Stroup WW (2000) Soil quality assessment after weed-control tillage in a no-till wheat-fallow cropping system. Soil Science Society of America Journal. 64(7): 339-346.
10
Kumar B, Pandey P and Maheshwari DK )2009( Reduction in dose of chemical fertilizers and growth enhancement of sesame (Sesamum indicum L.) with application of rhizospheric competent pseudomonas aeruginosa LES4. European Journal of Soil Biology. 45(3): 334-340.
11
Litterick AM, Harrier L, Wallace P, Watson CA and Wood M (2004) The role of uncomposted materials, composts, manures and compost extracts in reducing pest and disease incidence and severity in sustainable temperate agricultural and horticultural crop production. A review. Critical Reviews in Plant Sciences. 6(2): 453-479.
12
Malik MA, Saleem M, Cheema MA and Ahmed S )2003( Influence of different nitrogen levels on productivity of sesame (Sesamum indicum L.) under varying planting patterns. International Journal Agriculture and Biology. 4(23): 490-492.
13
Phillips RE, Blevins RL, Thomas GW, Frye WW and Phillips SH (1980) No-tillage systems. Agronomy Journal. 78(1): 951-954.
14
Warman PR, Burnham JC and Eaton LJ (2009) Effects of repeated applications of municipal solid waste compost and fertilizers to three low bush blueberry fields. Scientia Horticulturae. 122(9): 393-398.
15
Zobeck TM )2004( Rapid soil particle size analyses using laser diffraction. Applied Engineering Agriculture. 20(5): 633-639.
16
ORIGINAL_ARTICLE
کمیسازی واکنش جوانهزنی تودههای مختلف ریحان به دما
بهمنظور بررسی واکنش جوانهزنی بذور گیاه دارویی ریحان (.Ocimum basilicum L) به دما و تعیین دماهای کاردینال برای درصد و سرعت جوانهزنی، آزمایشی بهصورت تجزیهی مرکب در قالب طرح کاملاً تصادفی با چهار تکرار و شش سطح دمایی (8، 15، 20، 25، 30 و35 درجهی سانتیگراد) در آزمایشگاه تکنولوژی بذر پردیس ابوریحان دانشگاه تهران به اجرا درآمد. در این تحقیق 22 تودهی ریحان شامل تهران (سبز)، شهرری (سبز)، بیرجند (سبز)، بیرجند (بنفش)، شیراز (سبز)، زابل (سبز)، زاهدان1 (سبز)، زاهدان2 (سبز)، کرمانشاه (سبز)، پیشوا (سبز)، پیشوا (بنفش)، ملایر (سبز)، خاش (سبز)، تنکابن محلی (سبز)، اصفهان 2 (سبز)، اصفهان 2 (بنفش)، اصفهان 3 (سبز)، اصفهان 4 (سبز)، مشهد (سبز)، ناپولتا آمریکایی (سبز)، جینویس ایتالیایی (سبز) و سوئیس (سبز) مورد ارزیابی قرارگرفتند. بر اساس نتایج تجزیه واریانس اثر دما، ژنوتیپ و اثرات متقابل آنها بر درصد و سرعت جوانهزنی در سطح 5 درصد معنی دار بود. بازهی دمای بهینه برای درصد و سرعت جوانهزنی بهترتیب 78/27-10/19و 89/29-32/20 درجهی سانتیگراد بهدست آمد. در اکثر تودهها بالاترین سرعت جوانهزنی در دمای 25 درجهی سانتیگراد مشاهده شد. بین تودههای مورد ارزیابی در این تحقیق، توده اصفهان 3 در همهی دماها بالاترین سرعت جوانهزنی را به خود اختصاص داد. نتایج آزمایش نشان داد که واکنش درصد و سرعت جوانهزنی به دما بهترتیب با تابع بتا و دوتکهای توصیف خوبی داشتند و با استفاده از این دو مدل میتوان دماهای کاردینال را برای ریحان تعیین کرد.
https://jci.ut.ac.ir/article_67066_c6ca34813a7967eee95afacd5f55d941.pdf
2018-07-23
427
438
10.22059/jci.2018.235431.1757
تابع بتا
تابع دوتکهای
سرعت جوانهزنی
دماهای کاردینال
مدل
سحر
بینش
sahar.binesh@ut.ac.ir
1
دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه علوم زراعی و اصلاح نباتات، پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران، پاکدشت، تهران، ایران
AUTHOR
غلام عباس
اکبری
ghakbari@ut.ac.ir
2
دانشیار، گروه علوم زراعی و اصلاح نباتات، پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران، پاکدشت، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
الیاس
سلطانی
elias.soltani@yahoo.com
3
استادیار، گروه علوم زراعی و اصلاح نباتات، پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران، پاکدشت، تهران، ایران
AUTHOR
فاطمه
امینی
aminif@ut.ac.ir
4
استادیار گروه علوم زراعی و اصلاح نباتات، پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران
AUTHOR
پازکی ع، قاضی پیرکوهی م، شیرانی راد ا، بیگدلی و حبیبی د (1390) تغییرات درصد و عملکرد اسانس گیاه دارویی ریحان (Ocimum basilicum L.) تحت تأثیر کاربرد نیتروژن، منیزیم و منگنز. یافتههای نوین کشاورزی. 6(1): 16-6.
1
پورعلی قهفرخی ف، قادری فر ف، سلطانی ا و پهلوانی م (1393) برآورد دماهای کاردینال پنبه (Gossypium hirsutum L.). اولین کنگره بینالمللی و سیزدهمین کنگره ملی علوم زراعت و اصلاح نباتات. 3-1.
2
تبریزی ل، نصیری محلاتی م و کوچکی ع (1383) ارزیابی حرارتهای حداقل، بهینه و حداکثر جوانهزنی اسفرزه (Plantago ovata)و پسیلیوم (Plantago psyllium) مجله پژوهشهای زراعی ایران، 2(2): 150-143.
3
خدابخشی ا، کامکار ب و خلیلی ن (1394) کمیسازی واکنش سرعت جوانهزنی گیاه دارویی مرزه به دما و پتانسیل آب با استفاده از مدلهای رگرسیون غیرخطی. بهزراعی کشاورزی. 17(1):240-299.
4
رضاییمودب ع و نبویکلات م (1391) اثر کاربرد ورمیکمپوست و کودهای زیستی بر عملکرد بذر و اجزای عملکرد ریحان (Ocimum basilicum L.). اکوفیزیولوژی گیاهان زراعی. 2(22): 157-150.
5
سلطانی ا (1392) کاربرد نرمافزار SAS در تجزیههای آماری (برای رشتههای کشاورزی). انتشارات جهاد دانشگاهی (دانشگاه فردوسی مشهد)، مشهد. 184 صفحه.
6
سلطانی ا، اویسی م، سلطانی ا، گالشی س، قادریفر ف و زینلی ا (1393) مدلسازی جوانهزنی کلزای خودرو تحت تأثیر دما و پتانسیل آب: مدل هیدروترمال تایم. پژوهش علفهای هرز. 6(1):38-23.
7
قادریفر ف و سلطانی ا (1394) ارزیابی جوانهزنی ارقام کنجد در واکنش به دما: تعیین دماهای مهم و مقاومت به دما. علوم گیاهان زراعی ایران. 46 (3): 483-473.
8
محمودی ع، سلطانی ا و بارانی ح (1387) واکنش جوانهزنی یونجه حلزونی (Medicago scutellata L.) به دما. تولید گیاهان زراعی. 1(1): 63-54.
9
Akramghaderi F, Soltani A and Sadeghipour HR (2008) Cardinal temperature of germination in medical pumpkin (Cucurbita pepo conver pepo var. styriaca), borago (Borago officinalis L.) and black cumin (Nigella sativa L.). Asian Journal of Plant Science. 2: 101-109.
10
Baskin CC and Baskin J M (2004) A classification system for seed dormancy. Seed Science Research. 14(1): 1-16.
11
Bradford KJ (2002) Application of hydrothermal time to quantifying and modeling seed germination and dormancy. Weed Science. 50(2): 248-260.
12
Ditomaso J, and Erelyn AH (2007) Weeds of California and other Western States. Vol 1. Univesity of California Agriculture and Natural Resources Publication. 3488.
13
Evers GW (1991) Germination response of subterranean, berseem and rose clovers to alternating temperatures. Agronomy Journal. 83(6): 1000-1004.
14
Farzaneh S Soltani E Zeinali E and Ghaderi-Far F (2014) Screening Oilseed Rape Germination for Thermotolerance Using a Laboratory-Based Method. Seed Technology. 36(1): 15-27.
15
Hardegree SP and Winstral AH (2006). Predicting Germination Response to Temperature. II. Three-dimensional Regression, Statistical Gridding and Iterative-probit Optimization Using Measured and Interpolated-subpopulation Data. Annals of Botany. 98(2): 403-410.
16
Jame YW and Cutforth HW (2004) Simulating the effects of temperature and seeding depth on germination and emergence of spring wheat. Agricultural For Meteorology. 124(3-4): 207-218.
17
Jami Al-Ahmadi M and Kafi M (2007) Cardinal temperatures for germination of Kochia scoparia (L.). Journal of Arid Environments. 68(2): 308-314.
18
Khalid AK., Hendawy SF and El-Gezawy E (2006) Ocimum basilicum L production under organic farming. Research Journal of Agriculture and Biological Sciences. 2(1): 25-32.
19
Labra M, Miele M, Ledda B, Grassi F, Mazzei M and Sala F (2004). Morphological characterization essential oil composition and DNA genotyping of Ocimum basilicum L. cultivars. Plant Science. 167(4): 725-731.
20
Soltani A, Robertson M J, Torabi B, Yousedi-Daz M and Sarparast R (2006) Modeling seedling emergence in chickpea as influenced by temperature and sowing depth. Agricultural and Forest Meteorology. 138(1-4): 156-167.
21
Soltani E, Galeshi S, Kamkar B and Akramghaderi F (2008) Modeling seed aging effects on the response of germination to temperature in wheat. Seed Science and Biotechnology. 2(1): 32-36.
22
Soltani E, Soltani A, Galeshi S, Ghaderi-Far F and Zeinali E (2013) Seed Bank Modelling of Volunteer Oil Seed Rape: from Seeds Fate in the Soil To Seedling Emergence. Planta Dania. 31(2): 267-279.
23
Soltani A, Galeshi S, Zenial E and Lithify N (2002) Germination seed reserve utilization and seedling growth of chickpea as affected by salinity and seed size. Seed Science Technology. 30(1): 51-60.
24
Seefeldt SS, Kidwell KK and Waller JE (2002) Base growth temperatures, germination rates and growth response of contemporary spring wheat (Triticum aestivum L.) cultivars from the US Pacific Northwest. Field Crops Research. 75(1): 47-52.
25
SadrabadiHaghighi R and Sazevari G (2011) Evaluation of effect on Alhajipseudlhaji germination response to salinity and temperature. World Applied Sciences Journal. 13(1): 157-164.
26
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر رطوبت انبار و تنظیم کننده رشد اپی براسینولید بر ویژگی های پس از برداشت میوه پرتقال رقم تامسون ناول
خسارت غیرسرمایی پوست (NCPP) یکی از عوامل تخریب فیزیولوژیکی و بعد از برداشت در پوست میوههای مرکبات میباشد. هدف از این تحقیق، بررسی اثر کمبود رطوبت نسبی در انبار خشک (%35-30=RH و دمای 22-18درجه سانتی گراد) نسبت به انبار معمولی (%75-70= RH و دمای 8-6درجه سانتی گراد) و 24-اپیبراسینولید صفر، 5 و 10 میلیگرم در لیتر در زمانهای مختلف انبارداری (15 و 30 روز) بر عمر پس از برداشت پرتقال تامسون ناول میباشد. آزمایش بهصورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی در زمستان 1394 به مدت 30 روز و در 3 تکرار و 5 نمونه انجام شد. صفاتی نظیر درصد کاهش وزن، میزان خسارت غیرسرمایی پوست، درصد باز بودن روزنهها، مواد جامد محلول، اسید قابل تیتراسیون، نشت یونی، میزان فعالیت آنزیم کاتالاز و مقدار مالوندیآلدئید در میوه اندازهگیری شد. نتایج نشان دادند که تنش خشکی بهطور معنیداری باعث افزایش کاهش وزن (%67/9)، خسارت غیرسرمایی پوست (33/3 code) و فعالیت آنزیم کاتالاز پوست میوهها (136/0) گردید. نگهداری میوهها در محیط خشک منجر به کاهش روزنه های باز پوست میوه از 3/55 به 1/36 درصد شد که با کاربرد 24-اپیبراسینولید، روزنههای روی پوست میوه به دلیل اثر متعادل کننده این تنظیمکننده رشد، در حد انبار معمولی (1/51 درصد) باز باقی ماندند. همچنین کاربرد 24-اپیبر در غلظت 5 میلیگرم در لیتر به طور معنیداری سبب کاهش خسارت غیرسرمایی پوست و کاهش وزن شد. با توجه به اثر معنیدار غلظت 5 میلیگرم در لیتر 24-اپیبراسینولید روی کاهش نرخ افت وزن، مقدار خسارت غیرسرمایی پوست و مقدار فعالیت کاتالاز پوست میوهها، این تیمار بهصورت کاربردی توصیه میگردد.
https://jci.ut.ac.ir/article_67160_67f485d0e39dc4e1b6114ce4a38e2080.pdf
2018-07-23
439
452
10.22059/jci.2018.232322.1735
تنش خشکی
خسارت غیر سرمایی پوست
روزنه
کاتالاز
مالون دی آلدهید
جواد
گرایلی
j.graili@yahoo.com
1
دانش آموخته کارشناسی ارشد، گروه علوم باغبانی، واحد علوم و تحقیقات تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
مهدی
حدادی نژاد
mehdihadadi@gmail.com
2
استادیار، گروه علوم باغبانی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران
LEAD_AUTHOR
حسین
مرادی
moradiho@yahoo.com
3
استادیار، گروه علوم باغبانی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران
AUTHOR
مرضیه
قنبری جهرمی
ghanbari@srbiau.ac.ir
4
استادیار، گروه علوم باغبانی، واحد علوم و تحقیقات تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
آمارنامه کشاورزی (1394) آمار جهاد کشاورزی ایران. سال 1394.
1
حسنزاده س، حبیبی ف و امیری م الف (1394) اثر محلولپاشی کود آمینول فورته بر واکنشهای فیزیولوژیکی و بیوشیمیایی انار رقم نادری در شرایط تنش خشکی. نشریه علوم باغبانی(علوم و صنایع کشاورزی). 29(3): 465-459.
2
راحمی م (1377) مقدمهای بر فیزیولوژی و جابجایی پس از برداشت میوه و سبزی ه.ا چاپ دوم. انتشارات دانشگاه شیراز. 259 صفحه.
3
ربیعی و (1382) بررسی واکنشهای فیزیولوژیکی و مورفولوژیکی برخی ارقام انگور به تنش خشکی. دانشگاه تهران. تهران. رساله دکتری.
4
محسنزاده س، فرهی آشتیانی ص، ملبوبی م ع و قناتی ف (1382) اثر تنش خشکی و کلروکولین کلراید بر رشد و فتوسنتز گیاهچه دو رقم گندم. پژوهش و سازندگی، پاییز 1382. 60: 56-64.
5
مومنپور ع (1394) اثر تنش شوری بر خصوصیات رشدی برخی از ژنوتیپهای انتخابی بادام (Prunus dulcis) پیوند شده بر روی پایه GF677. دانشگاه گیلان. گیلان. رساله دکتری.
6
Aghdam MS, Asghari M, Farmani B, Mohayeji M and Moradbeygi H (2012) Impact of postharvest brassinosteroids treatment on PAL activity in tomato fruit in response to chilling stress. Scientia Horticulturae. 144: 116-120.
7
Agusti M, Almela V, Juan M, Alferez F, Tadeo FR and Zacarias L (2001) Histological and physiological characterization of rind breakdown of ‘Navelate’ sweet orange. Annals of Botany. 88: 415-422.
8
Alferez F, Lluch Y and Burns JK (2008) Phospholipase A2 postharvest peel pitting in citrus fruit. Postharvest Biology and Technology. 49: 69-76.
9
Alferez F, Agusti M and Zacarias L (2003) Postharvest rind staining Navel oranges is aggravated by changes in storage relative humidity: effect on respiration, ethylene production and water potential. Postharvest Biology and Technology. 28: 143-152.
10
Anuradha S and Rao SSR (2007) The effect of brassinosteroids on radish (Raphanus sativus L.) seedlings growing under cadmium stress. Plant, Soil and Environment. 53: 465-472.
11
Bajgaz A (2000) Effect of brassinosteroids on nucleic acids and protein content in cultured cells of Chorella vulgaris. Plant Physiology and Biochemistery. 38:209-215.
12
Chen J, Mao L, Mi H, Lu W, Ying T and Luo Z (2016) Involvement of abscisic acid in postharvest water-deficit stress associated with the accumulation of anthocyanins in strawberry fruit. Postharvest Biology and Technology. 111: 99-105.
13
Denekamp M and Smeekens SC (2003) Integration of wounding and osmotic stress signals determines the expression of the AtMYB102 transcription factor gene. Plant Physiology. 132: 1415-1423.
14
Dexter ST, Tottingham WE and Graber LF (1930) Preliminary results in measuring the hardiness of plants. Journal of Plant Physiology. 5: 215-223.
15
Dexter ST, Tottingham WE and Graber LF (1932) Investigations of the hardiness of plants by measurement of electrical conductivity. Journal of Plant Physiology. 7: 63-78.
16
Ershova A and Khripach V (1996) Effect of epibrassinolide on lipid peroxidation in Pisum sativum at normal aeration and under oxygen deficiency. Russ Journal of Plant Physiology. 43: 750-752.
17
Gao H, Zhang Z, Gang Lv X, Cheng N, Peng N and Cao W (2016) Effect of 24-epibrassinolide on chilling injury of peach fruit in relation to phenolic and proline metabolisms. Postharvest Biology and Technology. 111: 390-397.
18
Grove MD, Spencer GF, Rohwedder WK, Mandava NB, Worley JF and Wathen JD (1979) Brassinolide a plant growth promoting steroid isolated from Brassica napus pollen. Nature. 281: 216-217.
19
Hamada K (1986) Brassinolide in crop cultivation. In: Macgregor, P. (Ed.), Plant Growth Regulators in Agriculture. Food Fertility Technology. Central Asia Pacific Region. pp. 190-196.
20
Hodges D, Delong JM, Forney CF and Prange RK (1999) Improving the thiobarbituric acidreactive substances assay for estimating lipid peroxidation in plant tissues containing anthocyanin and other interfering compounds. Planta. 207: 604-611.
21
Hoekstra FA, Golovina EA and Buitink J (2001) Mechanisms of plant desiccation tolerance. Plant Science. 6: 431-438.
22
Houk LG, Jenner JF and Mackey BE (1990) Seasonal variability of the response of desert lemons to rind injury and decay caused by quarantine cold treatments. The Journal of Horticultural Science and Biotechnology. 65: 611-617.
23
Jaisingh SN and Ota Y (1993) Effects of epi- brassinolide on gram (Cicer arietinum) plants grow under water stress in juvenile stage. Indian Journal of Agricultural Science. 63:395-397.
24
Lafuente MT and Zacarias L (2006) Postharvest physiological disorders in citrus fruit. Stewart Postharvest Review. 1: 1-9.
25
Lafuente MT and Sala JM (2002) Abscisic acid levels and the influence of ethylene, humidity and storage temperature on the incidence ofpostharvest rindstaning of ‘Navelina’ orange (Citrus sinensis L. Osbeck) fruit. Postharvest Biology and Technology. 25: 49-57.
26
Li L, Li J, Sun J, Li C, Sheng J, Zhng F, Liao F, He X, Liu G, Ling D and You X (2015) Effects of 2-butanol on quality and physiological characteristics of longan fruit stored at ambient temperature. Postharvest Biology and Technology. 101: 96-102.
27
Luttus S, Kinet JM and Bouharmont J (1996) Effects of various salts and mannitol on ion and proline accumulation in relation to osmotic adjustment in rice (Oryza sativa L.) callus cultures. Journal of Plant Physiology. 149: 1896-905.
28
Maalekuu K, Elkind Y, Leikin-Frenkel A, Lurie S and Fallik E (2006) The relationship between water loss, lipid content, membrane integrity and LOX activity in ripe pepper fruit after storage. Postharvest Biology and Technology. 42: 248-255.
29
Matos AR, d’Arcy-Lameta A, France M, Petres S, Edelman L, Kader J, Zuily-Fodil Y and Pham-Thi AT (2001) A novel patatin-like gene stimulated by drought stress encodes a galactolipid acyl hydrolase. FEBS Letters. 491: 188-192.
30
Meijer HJG and Munnik T (2003) Phospholipid-based signaling in plants. Annual Review of Plant Biology. 54: 265-306.
31
Miller G, Suzuki N, Ciftci-Yilmaz S and Mittler R (2010) Reactive oxygen species homeostasis and signalling during drought and salinity stresses. Plant, Cell and Environment. 33: 453-467.
32
Mittler R (2002) Oxidative stress, antioxidants and stress tolerance. Trends Plant Sciences. 7: 405-410.
33
Ogweno JO, Song XS, Shi K, Hu WH, Mao WH, Zhou YH, Yu JQ and Nogues S (2008) Brassinosteroids alleviate heat-induced inhibition of photosynthesis by increasing carboxylation efficiency and enhancing antioxidant systems in Lycopersicon esculentum. Plant Growth Regulation. 27: 49-57.
34
Ozdamir F, Bor M, Demiral T and Turkan I (2004) Effects of 24-epibrassinolide on seed germination, seedling growth, lipid peroxidation, proline content and anti oxidative system of rice (Oriza sativa L.) under salinity stress. Plant Growth Regulation. 42: 203-211.
35
Romero P, Gandia M and Alferez F (2015) Post harvest water stress leading to peel disorders in citrus fruit involves regulation of phospholipases by ABA. Acta Horticulturae. 1015-1020.
36
Romero P, Rodrigo MJ, Alférez F, Ballester AR, González-Candelas L, Zacarías L and Lafuente MT (2012) Unravelling molecular responses to moderate dehydration in harvested fruit of sweet orange (Citrus sinensis L. Osbeck) using a fruit-specific ABA-deficient mutant. Journal of Experimental Botany. 63: 2753-2767.
37
Sala JM and Lafuente MT (2000) Catalase enzyme activity is related to tolerance of mandarin fruits to chilling. Postharvest Biology and Technology. 20: 81-89.
38
Zhao DY, Shen L, Fan B, Liu KL, Yu MM, Zheng Y, Dign Y and Sheng JP (2009) Physiological and genetic properties of tomato fruits from 2 cultivars differing in chilling tolerance at cold storage. Journal of Food Science. 74: 348-352.
39
Zhu F, Yun Z, Qiaoli M, Gong Q, Zeng Y, Xu J and Cheng Y (2015) Effect of exogenous 24-epi brassinolide treatment on post harvest quality and resistance of Satsuma mandarin (Citrus unshiu). Postharvest Biology and Technology. 8-15.
40
Yun Z, Gao H, Liu P, Liu S, Luo T, Jin S, Xu Q, Xu J, Cheng Y and Deng X (2013). Comparative proteomic and metabolomic profiling of citrus fruit with enhancement of disease resistance by postharvest heat treatment. BMC Plant Biol. 13(44): 1-16.
41
Sun J, You X, Li L, Peng H, Su W, Li C, He Q and Liuo F (2011). Effects of a phospholipase D inhibitor on postharvest enzymatic browning and oxidative stress of litchi fruit. Postharvest Biology and Technology. 62: 288-294
42
Aebi H (1983). Catalase. In: Bergmeyer H, (Ed.), "Methods of Enzymatic Analysis 3. Verlag Chemie", Weinheim, Germany, 273-277.
43
ORIGINAL_ARTICLE
اثر سطوح مختلف نیتروژن و کود سبز بر عملکرد و کارایی مصرف نیتروژن در گیاه دارویی خرفه
بهمنظور بررسی اثر کود سبز و مقادیر نیتروژن بر عملکرد و کارایی مصرف نیتروژن در خرفه آزمایشی در سال زراعی 94-1393 در مزرعه تحقیقاتی دانشگاه بیرجند بهصورت کرتهای خرد شده در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی در سه تکرار انجام شد. چهار کود سبز شامل: شاهد (بدون کود سبز)، ماشک گلخوشهای (Vicia villosa L.)، منداب (Eruca sativa L.) و مخلوط منداب و ماشک گلخوشهای بهعنوان عامل اصلی و سه سطح کود نیتروژن بهصورت خالص شامل: صفر (شاهد)، 50 و 100 کیلوگرم در هکتار بهعنوان عامل فرعی بودند. نتایج نشان داد که کاربرد کود سبز تأثیری بر عملکرد دانه و علوفه خشک خرفه نداشت. مصرف 100 کیلوگرم نیتروژن خالص در هکتار نیز موجب افزایش 81/18 درصدی عملکرد علوفه خشک (3/3992 کیلوگرم در هکتار) نسبت به شاهد (1/3360 کیلوگرم در هکتار) شد. همچنین، استفاده از کود سبز در سطوح بالای نیتروژن باعث بهبود عملکرد و محتوای نیتروژن زیستتوده و کاهش کارایی جذب و زراعی نیتروژن بر مبنای علوفه شد. با توجه به کاهش کارایی نیتروژن علیرغم مصرف کودهای سبز و نیتروژن و با در نظر گرفتن هزینههای تولید و مشکلات زیستمحیطی، محتوای نیتروژن موجود در خاک (6/54 کیلوگرم در هکتار) جهت تولید پایدار دانه و 50 کیلوگرم در هکتار نیتروژن جهت تولید علوفه خرفه کفایت نموده و مصرف بیشتر نیتروژن جنبه تجملی خواهد داشت.
https://jci.ut.ac.ir/article_67070_c3bc710fc9f54834e20afb5a75f269fe.pdf
2018-07-23
453
465
10.22059/jci.2018.238176.1799
درصد نیتروژن زیست توده
عملکرد دانه
عملکرد علوفه
ماشک گل خوشهای
منداب
حامد
جوادی
hjavadi_2006@yahoo.com
1
دانشجوی دکتری، گروه اگروتکنولوژی، پردیس بینالملل، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران
AUTHOR
پرویز
رضوانی مقدم
prm93@yahoo.com
2
استاد، دانشگاه فردوسی مشهد، دانشکده کشاورزی، گروه زراعت و اصلاح نباتات، تخصص: گیاهان دارویی، اگرواکولوژی
LEAD_AUTHOR
محمدحسن
راشد محصل
mhrashed@yahoo.com
3
استاد، گروه اگروتکنولوژی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران
AUTHOR
محمد جواد
ثقه الاسلامی
mjseghat@yahoo.com
4
دانشیار، گروه زراعت، دانشکده کشاورزی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد بیرجند، بیرجند، ایران
AUTHOR
اینانلوفر م، امیدی ح و پازکی ع ر (1392) تغییرات مورفولوژیکی، زراعی و محتوای روغن گیاه خرفه (Portulaca oleracea L.) تحت تأثیر خشکی و کود زیستی/ شیمیایی نیتروژن. فصلنامه گیاهان دارویی. 48: 170-184.
1
اسدی ق ع، مومن ع، نورزاده م و خرم دل س (1392) اثر سطوح مختلف کودهای آلی و شیمیایی بر عملکرد و شاخصهای کارایی نیتروژن در گیاه دارویی اسفرزه (Plantago ovata). نشریه بومشناسی کشاورزی. 5(4): 373- 382.
2
انصاری اردلی س و آقاعلیخانی م (1394) اثر تراکم بوته و مقدار کود نیتروژن بر عملکرد و کیفیت علوفه تاجخروس زراعی (Amaranthus cruentus L.). مجله علوم زراعی ایران. 17(1): 35-45.
3
جهان م، امیری م ب، اقوانی شجری م و تهامی م ک (1392) بررسی کمیت و کیفیت تولید کدو پوستکاغذی (Cucurbita pepo L.) تحت تأثیر کشت گیاهان پوششی زمستانه خلر (Lathyrus sativus) و شبدر ایرانی (Trifolium resopinatum)، تلقیح با ریزوباکتری های تحریک کننده رشد گیاه و کاربرد کودهای آلی. نشریه پژوهشهای زراعی ایران. 11(2): 337-356.
4
جهان م، امیری م ب، شباهنگ ج، احمدی ف و سلیمانی ف (1392) بررسی اثرات گیاهان پوششی زمستانه و ریزوباکترهای تحریککننده رشد بر جنبههایی از حاصلخیزی خاک و عملکرد محصول در یک سیستم ارگانیک تولید ریحان (Ocimum basilicum L.). نشریه پژوهشهای زراعی ایران. 11(4): 562-572.
5
جوادی ح، رضوانی مقدم پ، ثقهالاسلامی م ج و موسوی غ ر (1396) بررسی اثر تراکم و تاریخ کاشت بر عملکرد و اجزای عملکرد خرفه (Portulaca oleracea L.). نشریه پژوهشهای زراعی ایران. 15(1): 113-123.
6
رضوانی مقدم پ، سیدی م و آزاد م (1393) مقایسه تأثیر منابع آلی، شیمیایی و بیولوژیک نیتروژن بر کارایی مصرف نیتروژن در سیاهدانه (Nigella sativa L.). دوماهنامه علمی- پژوهشی تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران. 30(2): 260-274.
7
سلطانی نژاد ف، فلاح س ا و حیدری م (1392) اثر منابع و مقادیر مختلف نیتروژن بر رشد و تولید زیستتوده گیاه دارویی خرفه. نشریه تولید گیاهان زراعی. 6(3): 125-143.
8
صمدانی ب و منتظری م (1388) استفاده از گیاهان پوششی در کشاورزی پایدار. انتشارات مؤسسه تحقیقات گیاه پزشکی کشور. تهران.186 صفحه.
9
قاسمی س و موسوی نیک م (1393) اثر باکتریهای محرک رشد، کود نیتروژن و گوگرد بر خصوصیات کمی و کیفی گیاه کرچک (Ricinus communis L.) در منطقه سیستان. مجله بومشناسی کشاورزی. 6(2): 275-289.
10
کوچکی ع ر، نصیری محلاتی م، مرادی ر و علیزاده ی (1394) اثر سطوح مختلف نیتروژن بر عملکرد و کارایی مصرف نیتروژن در کشت مخلوط ذرت و پنبه. نشریه پژوهشهای زراعی ایران. 13(1): 1-13.
11
گرامی ف، آیینه بند ا و فاتح ا (1392) اثر کودهای سبز و کود شیمیایی نیتروژنی بر رشد اولیه، عملکرد و اجزای عملکرد گندم. نشریه دانش کشاورزی و تولید پایدار. 23(1): 1-17.
12
لامعی هروانی ج و اسماعیلی م (1393) تأثیر کشت دوم گیاهان خلر و ماشک بهعنوان کود سبز بر برخی خصوصیاتخاک و عملکردپیاز وگندم در چرخه تناوب زراعی. مجله بهزراعی نهال و بذر. 2-30(1): 1-18.
13
یزدانی بیوکی ر، رضوانی مقدم پ، خزاعی ح ر و آستارایی ع ر (1389) بررسی تأثیر کودهای دامی و شیمیایی بر خصوصیات کمی و کیفی گیاه دارویی ماریتیغال (Silybum marianum L.). نشریه پژوهشهای زراعی ایران. 8(5): 738-746.
14
یوسفیان قهفرخی ح ا، ابدالی مشهدی ع ر، بخشنده ع م و لطفی جلال آبادی ا (1394) بررسی اثر مواد جاذبالرطوبه، کودهای آلی و شیمیایی بر عملکرد کمی و کیفی گیاه دارویی خرفه (Portulaca oleracea L.) در منطقه اهواز. مجله فرآیند و کارکرد گیاهی. 4(13): 87-96.
15
Berenguer P, Santiveri F, Boixadera J and Lloveras J (2009) Nitrogen fertilization of irrigated maize under Mediterranean conditions. European Journal of Agronomy. 30: 163-171.
16
Bingham IJ, Karley AJ, White PJ, Thomas WTB and Russell JR (2012) Analysis of improvements in nitrogen use efficiency associated with 75 years of spring barley breeding. European Journal of Agronomy. 42: 49-58.
17
Den Hollander NG, Bastiaans L and Kropff MJ (2007) Clover as a cover crop for weed suppression in an intercropping design. II. Competitive ability of several clover species. European Journal of Agronomy. 26: 104-112.
18
Dordas CA and Sioulas C (2008) Safflower yield, chlorophyll content, photosynthesis, and water use efficiency response to nitrogen fertilization under rainfed conditions. Industrial Crops and Products. 27: 75-85.
19
Ghahramani R, Eidi M, Ahmadian H, Hamidi Nomani M, Abbasi R, Alipour M and Anissian (2016) Anti-diabetic effect of Portulaca oleracea (purslane) seeds in alloxan-induced diabetic rats. International Journal of Medical Laboratory. 3(4): 282-289.
20
Guo TW (2006) Crop yield, nitrogen uptake and nitrate-nitrogen accumulation in soil as affected by 23 annual applications of fertilizer and manure in the rainfed region of Northwestern China. Nutrient Cycling in Agroecosystems. 76: 81-94.
21
Hirel B, Martin A, Terce-Laforque T, Gonzalez-Moro MB and Estavillo JM (2005) Physiology of maize I: a comprehensive and integrated view of nitrogen metabolism in a C4 plant. Physiologia Plantarum. 124: 167–177.
22
Keerthi P, Pannu RK, Dhaka AK, Daniel J and Yogesh A (2017) Yield, nitrogen uptake and nutrient use efficiency in Indian mustard (Brassica juncea L.) as effected by date of sowing and nitrogen levels in Western Haryana, India. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences. 6(4): 1168-1177.
23
Kumar R and Kushwaha M (2017) Influence of nitrogen levels and weed management practices on yield and quality of forage pearl millet (Pennisetum glaucum L.). Indian Journal of Animal Nutrition. 34(1): 64-69.
24
Mosavi SB, Jafarzadeh AA, Neishabouri MR, Ostan S and Feiziasl V (2009) Rye green manure along with nitrogen fertilizer application increases wheat (Triticum aestivum L.) production under dryland condition. International Journal of Agriculture Research. 4(6): 204-212.
25
Ogg CL (1960) Determination of nitrogen by the micro-Kjeldahl method. Journal of the Association of Official Analytical Chemists. 43: 689-693.
26
Raun WR and Johnson GV (1999) Improving nitrogen use efficiency for cereal production. Agronomy Journal. 91: 357-363.
27
Singh U, Ladha JK, Castillo EG, Punzalan G, Tirol-Padre A and Duqueza M (1998) Genotypic variation in nitrogen use efficiency in medium and long-duration rice. Field Crops Research. 58: 35-53.
28
Singh M (2012) Influence of organic mulching and nitrogen application on essential oil yield and nitrogen use efficiency of rosemary (Rosmarinus officinalis L.). Archives of Agronomy and Soil Science. 59: 273-279.
29
Shanker N and Debnath S (2016) Hypolipidemic effect of purslane (Portulaca oleracea L.) in rats fed on high cholesterol diet. Journal of Nutrition and Food Sciences. 6(6): 1-8.
30
Yang SM, Malhi SS, Song JR, Xiong YC, Yue WY, Lu LL, Wang JG and and Guo TW (2006) Crop yield, nitrogen uptake and nitrate-nitrogen accumulation in soil as affected by 23 annual applications of fertilizer and manure in the rainfed region of Northwestern China. Nutrient Cycling in Agroecosystems. 76: 81-94.
31
Yang YC, Zhang M, Zheng L, Cheng DD, Liu M and Geng YQ (2011) Controlled release urea improved nitrogen use efficiency, yield, and quality of wheat. Agronomy Journal. 103(2): 479-485.
32
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر اندازه بنه و آغشته سازی بنه با پلیآمینها بر عملکرد و صفات رویشی و کیفی زعفران
جهت بررسی اثر دو پلیآمین اسپرمیدین و پوترسین بر صفات رویشی و کیفی زعفران (Crocus sativus L.)، آزمایشی به صورت فاکتوریل در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با 18 تیمار و 3 تکرار در سال زراعی 95-1394 در مزرعه آموزشی دانشگاه تربیت مدرس اجرا شد. تیمارها شامل سه اندازۀ کوچک (5-3 گرم)، متوسط (7-5 گرم) و بزرگ (10-7 گرم) بنه و غلظتهای مختلف پلیآمین (غلظت صفر در آبمقطر، غلظت 5/0 و 1 میلیمولار اسپرمیدین و پوترسین) به همراه شاهد بودند. بیشترین درصد سبزشدن (56/95 درصد) از تیمار پوترسین 5/0 میلیمولار و بیشترین تعداد جوانۀ جانبی (میانگین 33/8 عدد) از اسپرمیدین 1 میلیمولار بهدست آمد. کاربرد پلیآمین، از طول، وزن تر و وزن خشک برگ کاست. بیشترین میزان کلروفیل و عملکرد بنۀ دختری، بهترتیب از غلظت 1 و 5/0 میلیمولار پوترسین حاصل شد. هر دو پلیآمین سبب کاهش محتوای تام فنلی و افزایش محتوای تام فلاونوئیدی در بنههای در حال رکود شدند، ولی اثر معنیداری بر محتوای نشاسته و کربوهیدرات محلول آنها نداشتند. تیمار پلیآمین اثر معنیداری بر وزن خشک کلاله و پیکروکروسین نداشت، ولی بر میزان کروسین افزود و در بنههای کوچک، سبب افزایش تعداد گل شد. پوترسین، بیشترین اثر را در افزایش وزن تر کلاله و کروسین داشت. با توجه به نتایج، جهت بهبود صفات رویشی و کیفی زعفران، استفاده از بنههای بزرگ و تیمار آنها با پوترسین، بهترین نتیجه را خواهد داد.
https://jci.ut.ac.ir/article_67071_1963a5c8f3cebfcc60dfcb7318dc42be.pdf
2018-07-23
467
485
10.22059/jci.2018.240612.1821
اسپرمیدین
پوترسین
ترکیبات فنلی
کروسین
گلدهی
سمیه
احسان فر
s.ehsanfar@gmail.com
1
دانش آموخته دکتری، گروه زراعت، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران.
AUTHOR
علی
سروش زاده
soroosh@modares.ac.ir
2
دانشیار، گروه زراعت، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
سید علی محمد
مدرس ثانوی
modaresa@modares.ac.ir
3
استاد، گروه زراعت، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
AUTHOR
مجید
قربانی جاوید
mjavid@ut.ac.ir
4
استادیار، گروه زراعت، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
حاجی بلند ر و ابراهیمی ن (1390) تأثیر پلیآمینهای اگزوژن بر رشد، فتوسنتز و متابولیسم فنلها در گیاه توتون تحت تنش شوری. زیست شناسی گیاهی. 3 (8): 26-13.
1
روشهای آزمون زعفران، استاندارد ملی ایران 2-292 (1391) مؤسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران.
2
صحابی ح، جهان م، کوچکی ع و نصیری محلاتی م (1396) تأثیر وزن بنه مادری و محلولپاشی برگی بر عملکرد گل و بنه دو توده زعفران (Crocus sativus L.) ایرانی و اسپانیایی. نشریه علمی پژوهشی زراعت و فناوری زعفران. 5(2):123-131.
3
قبادی ف، قربانی جاویدم و سروشزاده ع (1393) تأثیر تاریخ کاشت و اندازه بنه بر عملکرد گل و صفات فیزیولوژیک زعفران (Crocus sativus L.) در شرایط آب و هوایی دشت ورامین. نشریه علمی پژوهشی زراعت و فناوری زعفران. 4(2): 256-276.
4
کوچکی ع و سیدی س م (1394) فنولوژی و روند تشکیل بنههای دختری زعفران (Crocus sativus L.) در طی دوره رشد. نشریه پژوهشهای زعفران. 3(2):134-154.
5
گلذاری جهان آبادی م، بهدانی م ع، سیاری ز و خرم دل سرور م ح (1395) اثر کاربرد برخی منابع کودی و وزن بنه مادری بر خصوصیات رویشی و صفات کیفی زعفران(Crocus sativus L.) . پژوهشهای زعفران. 4(2):172-186.
6
Aragão VPM, Navarro BV, Passamani LZ, Macedo AF, Floh EIS, Silveira V and Santa-Catarina C (2015) Free amino acids, polyamines, soluble sugars and proteins during seed germination and early seedling growth of Cedrela fissilis Vellozo (Meliaceae), an endangered hardwood species from the Atlantic Forest in Brazil. Theoretical and Experimental Plant Physiology. 27(2): 157-169.
7
Ariyaratne MM (2014) HPLC analysis of polyamines in Arabidopsis thaliana lines altered in the expression of polyamine transport. Bowling Green State University, Ph.D. Dissertation.
8
Arnon DI (1949) Copper enzymes in isolated chloroplasts. Polyphenol oxidase in Beta vulgaris L. Plant Physiology. 24(1): 1- 16.
9
Arslan N, Gurbuz B, İpek A, Ozcan S, Sarihan E, Daeshian AM and Moghadassi MS (2007) The effect of corm size and different harvesting times on saffron (Crocus sativus L.) regeneration. Acta Horticulturae. 739: 113-117.
10
Blázquez S, Piqueras A, Serna MD, Casas JL and Fernández JA (2003) Somatic embryogenesis in saffron: optimisation through temporary immersion and polyamine metabolism. I International Symposium on Saffron Biology and Biotechnology. 650: 269-276.
11
ÇAVUŞOĞLU A (2017) The effect of exogenously applied plant growth regulators on plant development of saffron (Crocus sativus L.). Igdir University Journal of the Institute of Science and Technology. 7(1): 17-22.
12
De Juan JA, Córcoles HL, Muñoz RM and Picornell MR (2009) Yield and yield components of saffron under different cropping systems. Industrial Crops and Products. 30(2): 212-219.
13
Della Mea M, Di Sandro A, Dondini L, Del Duca S, Vantini F, Bergamini C, Bassi R and Serafini-Fracassini D (2004) A Zea mays 39-kDa thylakoid transglutaminase catalyses the modification by polyamines of light-harvesting complex II in a light-dependent way. Planta. 219: 754-764.
14
Esmaeili N, Ebrahimzadeh H, Abdi K and Safarian S (2011) Determination of some phenolic compounds in Crocus sativus L. corms and its antioxidant activities study. Pharmacognosy Magazine. 7(25): 74- 80.
15
Fei, Y, Xiao B, Yang M, Ding Q and Tang W (2016) MicroRNAs, polyamines, and the activities antioxidant enzymes are associated with in vitro rooting in white pine (Pinus strobus L.). SpringerPlus. 5(1): P 416.
16
Górecka K, Cvikrová M, Kowalska U, Eder J, Szafrańska K, Górecki R and Janas KM (2007) The impact of Cu treatment on phenolic and polyamine levels in plant material regenerated from embryos obtained in anther culture of carrot. Plant Physiology and Biochemistry. 45(1): 54-61.
17
He SY, Qian ZY, Tang FT, Wen N, Xu GL and Sheng L (2005) Effect of crocin on experimental atherosclerosis in quails and its mechanisms. Life Sciences. 77(8): 907-921.
18
Hoshyar R, Hosseinian M, Naghandar MR, Hemmati M, Zarban A, Amini Z, Valavi M, Beyki MZ and Mehrpour O (2016) Anti-dyslipidemic properties of Saffron: Reduction in the associated risks of atherosclerosis and insulin resistance. Iranian Red Crescent Medical Journal. 18(12): e36226.
19
Ihsan SA, Al-Mohammad MH and Al-Thamir SN (2014) The influence of spermidine and biofertilizer application on the growth, yield and some active constituents of saffron plant (Crocus sativus L.). Journal of Biology, Agriculture and Healthcare. 4(24): 131-135.
20
Jain D and Shrivastava S (2017). Estimation of total Phenolic, flavonoid and saponin content in different extracts of Butea monosperma bark. International Journal of Engineering Technology Science and Research. 4(7): 177-182.
21
Jirage DB, Ravishankar GA, Suvarnalatha G and Venkataraman LV (1994) Profile of polyamines during sprouting and growth of saffron (Crocus sativus L.) corms. Journal of Plant Growth Regulation. 13(2): 69-72.
22
Kamiab F, Salehabad MH and Zamanibahramabadi E (2015) Evaluation the effects of foliar treatments of polyamines and some organic acids on quantitative and qualitative traits in some pistachio cultivars. Journal of Nuts. 6(2): 131-142. (Abst.)
23
Liu JH, Honda C and Moriguchi T (2006) Involvement of polyamine in floral and fruit development. Japan Agricultural Research Quarterly. 40(1): 51-58.
24
Milajerdi A, Djafarian K and Hosseini B (2016) The toxicity of saffron (Crocus sativus L.) and its constituents against normal and cancer cells. Journal of Nutrition and Intermediary Metabolism. 3: 23-32.
25
Mollazadeh H, Emami S and Hosseinzadeh H (2015) Razi’s Al-Hawi and saffron (Crocus sativus): a review. Iranian Journal of Basic Medical Sciences. 18(12): 1153.
26
Palma F, Carvajal F, Jamilena M and Garrido D (2016) Putrescine treatment increases the antioxidant response and carbohydrate content in zucchini fruit stored at low temperature. Postharvest Biology and Technology. 118: 68-70.
27
Rahdari P and Hoseini SM (2013) Roll of polyamines (spermidine and putrescine) on protein, chlorophyll and phenolic compounds in wheat (Triticum aestivum L.) under salinity stress. Journal of Novel Applied Sciences. 2(12): 746-751.
28
Rangan P, Subramani R, Kumar R, Singh AK and Singh R (2014) Recent advances in polyamine metabolism and abiotic stress tolerance. BioMed Research International. 2014: P 239621.
29
Rashid MD, Uddin MD, Asaeda T and Robinson RW (2017) Seasonal variations of carbohydrates in Pueraria lobata related to growth and phenology. Weed Biology and Management. 17(2): 103-111.
30
Rezvanypour S, Hatamzadeh A, Elahinia SA and Asghari HR (2016) Effect of exogenous polyamines on growth, flowering and corm production of' 'Golden Wave' and 'Blue Sea' cultivars of freesia. Journal of Science and Technology of Greenhouse Culture. 8(27): 76.
31
Rosmana A, Nasaruddin N, Hendarto H, Hakkar AA and Agriansyah N (2016) Endophytic association of Trichoderma asperellum within Theobroma cacao Suppresses vascular streak dieback incidence and promotes side graft growth. Mycobiology. 44(3): 180-186.
32
Shafiee M, Arekhi S, Omranzadeh A and Sahebkar A (2017) Saffron in the treatment of depression, anxiety and other mental disorders: current evidence and potential mechanisms of action. Journal of affective disorders. 227: 330-337.
33
ORIGINAL_ARTICLE
کاهش اثرات تنش کمبود آب در ارقام گلرنگ با استفاده از پرایمینگ بذر
ﺑﻪﻣﻨﻈﻮر ارزیابی استفاده از پرایمینگ بذر جهت کاهش اثرات تنش کمبود آب در ارقام گلرنگ، آزمایشی بهصورت اسپلیت پلات فاکتوریل بر پایه طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار در سال 1394 در مرکز تحقیقات کشاورزی شاهرود اجرا گردید. کرت اصلی شامل آبیاری در سه سطح بر اساس میزان تبخیر از تشتک تبخیرکلاس A شامل: عدم تنش کمآبی (60 میلیمتر تبخیر)، تنش کمآبی ملایم (120 میلیمتر تبخیر) و تنش کمآبی شدید (180 میلیمتر تبخیر) و کرت فرعی ترکیبی از دو فاکتور ارقام گلرنگ(گلدشت، سینا و صفه) و پرایمینگ بذر (بذور تیمار شده با اسیدسالیسیلیک و بذور شاهد) بود. ﻧﺘﺎﻳﺞ ﻧﺸﺎن داد ﻛﻪ تنش آبی شدید موجب کاهش 29 درصدی عملکرد دانه نسبت به شرایط نرمال شد که در این شرایط به ترتیب 33، 25، 29 و 40 درصد بر فعالیت آنزیمهای سوپراکسیددیسموتاز، پراکسیداز، آسکوربات پراکسیداز و کاتالاز افزوده شد و محتوای مالون دی آلدئید، پرولین و کارتنوئید افزایش معنیداری یافت ولی از میزان کلروفیل کاسته شد. براساس نتایج حاصل از آزمایش پرایمینگ بذر با اسید سالیسیلیک، با افزایش هفت تا نه درصدی فعالیت سیستم دفاع آنتی اکسیدانی آنزیمی و افزایش مقاومت گیاهان در برابر تنش کمآبی موجب بهبود عملکرد دانه در شرایط تنش گردید. برهمکنش آبیاری و رقم تاثیر معنیداری بر عملکرد دانه و فعالیت آنزیمهای کاتالاز، پراکسیداز و آسکوربات پراکسیداز داشت.
https://jci.ut.ac.ir/article_67167_c847a88439d79beb1cd7c3489fa2bfd7.pdf
2018-07-23
487
502
10.22059/jci.2018.244528.1858
آنتیاکسیدان
اسید سالیسیلیک
پرولین
کلروفیل
مالون دی آلدئید
شهرام
طاهری
taheri4448@gmail.com
1
دانشجوی دکتری، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی شاهرود، شاهرود، ایران
LEAD_AUTHOR
احمد
غلامی
ahgholami273@gmail.com
2
دانشیار، دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی شاهرود،شاهرود،ایران
AUTHOR
حمید
عباس دخت
habbasdokht@shahroodut.ac.ir
3
دانشیار، دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی شاهرود، شاهرود، ایران
AUTHOR
حسن
مکاریان
h.makarian@yahoo.com
4
دانشیار، دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی شاهرود، شاهرود، ایران
AUTHOR
محمودیه چم پیری ر، احسانزاده پ و سعیدی ق (1385) اثر رقم و سایهاندازی طبق و برگهای نزدیک آن بر عملکرد دانه گلرنگ و اجزای آن در اصفهان. دانش کشاورزی. 1(37): 157-165.
1
معراجی پور م، موحدی دهنوی م، دهداری ا، فرجی ه و معراجی پور م (1391) تأثیر تنش خشکی بر برخی خصوصیات فیزیولوژیکی چهار رقم گلرنگ بهاره در منطقه یاسوج. تنشهای محیطی در علوم زراعی. 5(2): 125-134.
2
موحدی دهنوی م، مدرس ثانوی س ع م، سروشزاده ع و جلالـی م (1383) تغییـرات میـزان پـرولین، قنـدهای محلـول کـل، کلروفیـل و فلورسانس کلروفیل در ارقام گلرنگ پاییزه تحت تنش خشکی و محلولپاشی روی و منگنز. مجله بیابان. 9(1): 94-108.
3
موسوی فر ب، بهدانی م ا و جامی الاحمدی م (1388) پاسخ ارقام گلرنگ بهاره به فواصل مختلف آبیاری در شرایط بیرجند. همایش منطقهای بحران آب و خشکسالی. رشت، ایران.
4
یداللهی پ، اصغریپور م ر، خیری ن و قادری ا (1393) اثر تنش خشکی و انواع کود آلی بر عملکرد روغن و ویژگیهای بیوشیمیایی گلرنگ (Carthamus tinctorius L). مجله تولید گیاهان روغنی. 1(2): 27-40.
5
Amini H, Arzani A and Bahrami F (2013) Seed yield and some physiological traits of safflower as affected by water deficit stress. International Journal of Plant Production. 7: 597-614.
6
Asada K and Takahashi M (1987) Production and scavenging of active oxygen radicals in photosynthesis. In: Kyle DJ, Osmond CB and Arntzen CJ (Eds.), Photoinhibition. Elsivier, Amsterdam. pp. 227-288.
7
Bates LS, Aldren RP and Teare LD (1973) Rapid determination of free proline for water stress studies. Plant and Soil. 39: 205-207.
8
Beauchamp C and Fridovich I (1971) Superoxide dismutase: improved assays and an assay applicable to acrylamide gels. Analytical Biochemistry. 44(1): 276-287.
9
Chandlee JM and Scandalios JG (1984) Analysis of variance affecting the catalase development program in Maize scutellum. Journal of Applied Genetics. 69: 71-77.
10
Cornic G and Fresneau C (2002) Photosynthetic carbon reduction and carbon oxidation cycles are the main electron sinks for photosystem II activity during a mild drought. Annals of Botany. 89: 887-894.
11
Davatgar N, Neishabouri MR, Sepaskhah AR and Soltani A (2009) Physiological and morphological responses of rice (Oryza sativa L.) to varying water stress management strategies. International Journal of Plant Production. 3: 19-32.
12
Eldahshan OA and Singab AB (2013) Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry Carotenoids. [Online]. Available at http://www.phytojournal.com. 2(1): 225-234.
13
Gambel PE and Burke JJ (1984) Effect of water stress on the chloroplast antioxidant system. I. Alterations in glutathione reductase activity. Plant Physiology. 76: 615-621.
14
Hamrouni I, Ben-Salah H and Marzouk B (2001) Effects of water-deficit on lipids of safflower aerial parts. Journal of Photochemistry. 58: 277-280.
15
Harris D, Pathan AK, Gothkar P, Joshi A, Chivasa W and Nyamudeza P (2001) On-farm seed priming: using participatory methods to revive and refine a key technology. Agricultural Systems. 69: 151-164.
16
Hayat S and Ahmad A (2007) Salicylic acid: a plant hormone. Springer.
17
Heath RL and Packer L (1968) Photoperoxidation in isolated chloroplasts. I. Kinetics and stoichiometry of fatty acid peroxidation. Archives in Biochemistry and Biophysics. 125: 189-198.
18
Hisao TC (1973) Plant responses to water stress. Annual Review Plant Physiology. 24: 519-570.
19
Hojati M, Modarres-Sanavy AMM, Karimi M and Ghanati F (2011) Responses of growth and antioxidant systems in Carthamus tinctorius L. under water deficit stress. Acta Physiologiae Plantarum. 33: 105-112.
20
Holy MC (1972) Indole acetic acid oxidase: a dual catalytic enzyme. Plant Physiology. 50: 15-18.
21
Huang J, Hirji R, Adam L, Rozwadowski KL, Hammerlindl JK, Keller WA and Selvaraj G )2000) Genetic engineering of glycinebetaine production toward enhancing stress tolerance in plants: metabolic limitations. Plant Physiology 122: 747-756.
22
Jabeen N and Ahmad R (2013) The activity of antioxidant enzymes in response to salt stress in safflower (Carthamus tinctorius L.) and sunflower (Helianthus annuus L.) seedlings raised from seed treated with chitosan. Journal of the Science of Food and Agriculture. 93(7): 1699-1705.
23
Mittler R )2002( Oxidative stress, antioxidants and stress tolerance. Trends Plant Science. 7: 405-409.
24
Mittler R, Vanderauwera S, Gollery M and Vanbreusegem F (2004) Reactive oxygen gene network of plants. Trends in Plant Science. 9: 490-498.
25
Movahhedy Dehnavy M, Modarres Sanavy SAM and Mokhtassi Bidgoli A (2009) Foliar application of zinc and manganese improves seed yield and quality of safflower (Carthamus tinctorius L.) grown under water deficit stress. Industrial Crops and Products. 30: 82-92.
26
Noctor B and Foyer CH (1998) Ascorbate and glutathione: Keeping active oxygen under control. Annual Review Plant Physiology. 49: 249-279.
27
Pasban Eslam B (2011) Evaluation of physiological indices for improving water deficit tolerance in spring safflower. Journal of Agricultural Science and Technology. 13: 327-338.
28
Soltani E and Soltani A (2015) Meta-analysis of seed priming effects on seed germination, seedling emergence and crop yield: Iranian studies. International Journal of Plant Production. 9(3): 413-432.
29
Sumanta N, Imranul Haque C, Nishika J and Suprakash R (2014) Spectrophotometric analysis of chlorophylls and carotenoids from commonly grown fern species by using various extracting solvents. Research Journal of Chemical Sciences. 4(9): 63-69.
30
Wood AJ (2005) Eco-physiological adaptions to limited water environments. In: Ajenks M and Hasegawa PM (Eds.), Plant Abiotic Stress. Blackwell Publisher, New York, pp. 10-41.
31
ORIGINAL_ARTICLE
واکنش سویا به مصرف سطوح مختلف نانوکود پتاسیم تحت شرایط قطع آبیاری در دشت مغان
بهمنظور بررسی تأثیر نانو کود پتاسیم بر رشد سویا در شرایط قطع آبیاری، آزمایشی در سالهای 1394 و 1395 بهصورت کرتهای خرد شده در قالب بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار در دشت مغان انجام گردید. عامل اصلی شامل چهار سطح قطع آبیاری آبیاری نرمال، قطع آبیاری در طول رشد رویشی، قطع آبیاری در طول گلدهی و قطع آبیاری در طول پر شدن دانه و فاکتور فرعی شامل سه سطح نانو کود پتاسیم پنج، 10 و 15 کیلوگرم در هکتار بودند. نتایج نشان داد که در تمامی مراحل قطع آبیاری مصرف نانو کود پتاسیم موجب تخفیف اثر تنش خشکی شد، بهطوری که بیشترین مقدار عملکرد و اجزاء آن در تیمار شاهد و تحت تأثیر قطع آبیاری با مصرف 15 کیلوگرم در هکتار نانو کود پتاسیم حاصل شد. همچنین، بالاترین مقادیر ارتفاع بوته (66 سانتیمتر)، فاصله اولین غلاف از زمین (20 سانتیمتر)، تعداد برگ در هر بوته (345) و تعداد شاخههای جانبی (66/19) در تیمار آبیاری نرمال با مصرف 15 کیلوگرم نانوکود پتاسیم بهدست آمد و کمترین آنها در تیمار قطع آبیاری در طول رشد رویشی با مصرف پنج کیلوگرم نانو کود پتاسیم حاصل شد. علاوه بر این، درصد روغن و پروتئین دانه بهشدت تحت تأثیر تنش خشکی بهویژه قطع آبیاری در مرحله پر شدن دانه قرار گرفتند. با توجه به نتایج میتوان بیان کرد که با مصرف 15 کیلوگرم در هکتار از نانو کود پتاسیم میتوان از اثرات ناشی از تنش خشکی بر عملکرد را بهویژه در مرحله پر شدن دانه در گیاه سویا بهمقدار 15 درصد کاهش داد.
https://jci.ut.ac.ir/article_67067_035d67b46c78c69cf58566fc71b822ab.pdf
2018-07-23
503
516
10.22059/jci.2018.236142.1768
تنش خشکی
دانه روغنی
رشد
عملکرد
فناوری نانو
امیرعباس
رستمی اجیرلو
abasat.rostami@yahoo.com
1
دانشآموخته دکتری، باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد پارس آباد مغان، دانشگاه آزاد اسلامی، پارس آباد مغان، ایران
AUTHOR
ابراهیم
امیری
eamiri57@yahoo.com
2
استاد، گروه مهندسی آب، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
LEAD_AUTHOR
اکبری غ، جوانمردی ز و خجستهکیا م (1388) مقایسه اثر فرمهای مختلف کود پتاسیم بر عملکرد و اجزای عملکرد دانه گندم در شرایط کمآبیاری. همایش ملی بحران آب در کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد شهر ری.
1
خواجویینژاد غ ، کاظمی ح، آلیاری ه، جوانشیر ع و آروین س م ج (1384) تأثیر رژیمهای آبیاری و تراکم کاشت بر عملکرد، کارایی مصرف آب و کیفیت دانه سه رقم سویا در کشت تابستانه در شرایط آبوهوایی کرمان. علوم و فنون. کشاورزی و منابع طبیعی. 9(4): 137-151.
2
دانشیان ج، مجیدیهروان الف و جنوبی پ (1381) بررسی تأثیر تنش خشکی و مقادیر مختلف پتاسیم بر خصوصیات کمی و کیفی سویا. فصلنامه علوم کشاورزی. 8(3): 95-108.
3
روستایی خ، موحدی دهنوی م، خادم س ع و اولیایی ح (1391) اثر نسبتهای مختلف پلیمر سوپرجاذب و کود دامی بر خواص کمی و کیفی سویا تحت تنش خشکی. مجله بهزراعی کشاورزی. 14(1): 33-42.
4
سامدلیری م، مظلوم پ، خدابنده ن (1389) بررسی اثرات مقادیر مختلف کود نیتروژن و پتاسیم بر درصد روغن و پروتئین دانه در کلزا. مجله زارعت و اصلاح نباتات. 6(4): 90-103.
5
یحیایی س غ ر (1386) اثر رژیمهای آبیاری بر عملکرد و اجزای عملکرد دانه ارقام رشد محدود و رشد نامحدود سویا. علوم کشاورزی و منابع طبیعی. 14(5): 68-79.
6
Chun L, Xiansheng W, Hao M, Zhanqin Z, Wenrui G and Li Z (2008) Functional properties of protein isolates from soybean stored on various condition. Food Chemistry. 111: 29-37.
7
Costa RCL, Lobato AKS, Oliveira Neto CF, Maia PSP, Alves GAR and Laughinghouse IVHD (2008) Biochemical and physiological responses in two Vigna unguiculata (L.) Walp cultivars under water stress. Journal of Agronomy. 7: 98-101.
8
De Rosa M R, Monreal C, Schnitzer M, Walsh R and Sultan Y (2010) Nanotechnology in fertilizers. Nature Nanotechnology. 5: 91-92.
9
Demirtas C, Yazgan S, Candogan BN, Sincik M, Buyukcangaz H and Gksoy AT (2010) Quality and yield response of soybean (Glycine max L.) to drought stress in sub-humid environment. African Journal of Biotechnology. 9: 6873-6881.
10
Farnia A and Omidi MM (2015) Effect of Nano-Zinc Chelate and Nano-Biofertilizer on Yield and Yield Components of Maize (Zea mays L.), Under Water Stress Condition. Indian Journal of Natural Sciences. 5: 132-148.
11
Flexas J and Medrano H (2008) Drought-inhibition of photosynthesis in C3- plants: stomatal and nonstomatal limitation revisited. Annals of Botany. 183: 183-189.
12
Jafarzadeh R, Jami Moeini M and Hokm Abadi MR (2013) Wheat yield response to foliar and soil application of potassium fertilizer Nano. Journal of Farming Research. 5: 189-97.
13
Kirkby EA and Mengel K (2001) Principles of Plant Nutrition, 5th edn. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands.
14
Lenssen A (2012) Soybean response to drought. Integrated Crop Management News Online. Iowa State University Extension. 2012. http://crops.extension.iastate. edu/cropnews/ 2012/06/soybean-response-drought. Accessed 22 Jun 2012.
15
Lu CM, Zhang CY, Wu JQ and Tao MX (2002) Research of the effect of nanometer on germination and growth enhancement of Glycine max and its mechanism. Soybean Science. 21: 168-172.
16
Maleki A, Naderi A, Siadat A, Tahmasbi A and Fazel SH (2012) The effect of water stress on phonological stages on yield and yield components of soybean. Journal of Crop Sciences. 15: 71-82.
17
Malek-Mohammadi M, Maleki A, Siaddat SA and Beigzade M (2013) The effect of zinc and potassium on the quality yield of wheat under drought stress conditions. International Journal of Agriculture Crop Science. 6: 1164-1170.
18
Marschner H (1995) Mineral Nutrition of Higher Plants. Academic Press. Limited, London.Second edition. 861 p.
19
Maser P, Gierth M and Schroeder IJ (2002) Molecular mechanisms of potassium and sodium uptake in plant. Plant and Soil. 247: 43-54.
20
Monica RC and Cremonini R (2009) Nanoparticles and higher plants. Caryologia. 62(17): 161-165.
21
Naderi MR and Abedi A (2012) Application of nanotechnology in agriculture and refinement of environmental pollutants. Nanotechnology Journal. 11: 18-26.
22
Nazaran MH, Keshavarz N, Baghaie N and Zanjani B (2012) Evaluations the interaction of nano potassium and nano iron chelate fertilizers on yield and yield components of Sweet Corn. 3rd International Conference on Conservation Agriculture in Southeast Asia. 1-2.
23
Norradini E, Moura MR and Mattoso LHC (2010) A preliminary study of the incorporation of NPK fertilizer into chitosan nanoparticles eXPRESS. Polymer Letters. 4: 509-515.
24
Novozamsky I R, van Eck JCh, Schouwenburg V and Walinga I (1974) Total nitrogen determination in plant material by means of the indophenol blue method. Netherlands Journal of Agricultural Science. 22:3-5.
25
Polizel AM, Medri ME, Nakashima K, Yamanaka N, Farias JR and Oliveira MC (2011) Molecular, anatomical and physiological properties of a genetically modified soybean line transformed with rd29A:AtDREB1A for the improvement of drought tolerance. Genetically Molecule Research.10: 36-41.
26
Rameshaiah GN, Pallavi J and Shabnam S (2015) Nano Fertilizers And Nano Sensors An Attempt For Developing Smart Agriculture. International Journal of Engineering Research and General Science. 3: 140-156.
27
Rostami Ajirloo A, Shaaban M and Rahmati Motlagh Z (2015) Effect of K Nano-Fertilizer and N Bio-Fertilizer on Yield and Yield Components of Tomato (Lycopersicon Esculentum L.). International Journal of Advantage Biological and Biometry Research. 3: 138-143
28
SAS (2002) The SAS System for Windows. Release 9.1. SAS Institute. Cary, NC, USA.
29
Shabala S (2003) Regulation of potassium transport in leaves: From molecular to tissue level. Annals of Botany. 92: 627-634.
30
Silveira JAG, Costa RCL, Viegas RA, Oliveira JTA and Figueiredo MVB (2003) N-Compound accumulation and carhydrate shortage on N2 fixation in drought-stressed and dewatered cowpea plants. Spanish Journal of Agricultural Research 1: 65-75
31
Siskani A, Seghatoleslami MJ and Moosavi GR (2015) Effect of Deficit Irrigation and Nano Fertilizers on Yield and some Morphological Traits of Cotton. Biological Forum-An International Journal. 7: 1710-1715.
32
Suppan S (2014) Nanotechnology Risk to Soil Health Institute of Agriculture and Trade Policy, First Avenue South Minneapolis, Minnesota.
33
Tarumingkeng RC and Coto Z (2003) Effects of drought stress on growth and yield of soybean. Science Philosopy PPs 702, Term paper, Graduate School, Borgor Agricultural University (Institute Pertaining Bogor), December 2003.
34
Zhu JK (2002) Salt and drought stress signal transduction in plants. Ann Rev Plant Biology 53: 247-273.
35
Vattani H, Keshavarz N and Baghaei H (2012) Effect of sprayed soluble different levels of iron chelate nano fertilizer on nutrient uptake efficiency in two varieties of spinach (Varamin 88 and Virofly). International Research Journal of Applied and Basic Sciences. 3: 2651-2656.
36
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی توان رشد در گیاه اسپناج مایهزنی شده با قارچ پیریفورموسپورا ایندیکا، مایکوریزا و قارچ های دیواره تاریک در تنش خشکی
در بومسازههای پر تنش همزیستی قارچ - ریشه پیامدهای خوبی بر رشد گیاه به همراه دارد. هدف از این پژوهش پیامد کاربرد قارچهای اندوفیت دیواره تاریک، در برابر دو قارچ مایکوریز (گلوموس موسهآ و گلوموس اینترارادیسز) و پیریفورموسپورا ایندیکا بر گیاه اسپناج در حالت بیتنش و باتنش (گنجایش زراعی (FC) و 50 درصد FC) بود. این پژوهش در گلخانه دانشگاه بوعلی سینا همدان در سال 95-1394 انجام شد. پس از مایهزنی گیاه اسپناج و سپری شدن دورهی رشد رویشی در گلخانه (شش هفته)، گیاهان برداشت شدند و درصد همزیستی با ریشه، وزن تر و خشک، اندازهی سبزینه و جذب برخی عناصر کم نیاز و پرنیاز بررسی شد. یافتههای این پژوهش نشان داد که قارچهای مایهزنی شده به خوبی توانستند با ریشههای گیاه اسپناج همزیستی داشته باشد. بیشترین وزن تر با مایهزنی قارچ مایکوریز موسهآ (20 گرم بر گیاه) و بیشترین وزن خشک (1/4 گرم بر گیاه)، سبزینه (7/2 میلیگرم بر گرم وزن خشک برگ) و نسبت پتاسیم به سدیم (4/8) با مایهزنی قارچ دیواره تاریک کروولاریا به دست آمد، ولی اندازهی فسفر در گیاهان مایهزنی شده با مایکوریز اینترارادیسز (2/311 میلیگرم فسفر در 100 گرم وزن خشک گیاه) بیشتر از دیگر تیمارها بود. این پژوهش نشان داد که همزیستی قارچهای دیواره تاریک با گیاه اسپناج به اندازهی همزیستی با مایکوریزا و قارچ پی.ایندیکا سودمند بود.
https://jci.ut.ac.ir/article_67168_51becd999fc48b386eda1b9b3b0852b5.pdf
2018-07-23
517
531
10.22059/jci.2018.245256.1865
پتاسیم
سالسولا
قارچ درونزی
ملانین
همزیستی
راحله
آل طه
rahelehaletaha@yahoo.com
1
دانشجوی دکتری، گروه علوم خاک، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان، ایران
LEAD_AUTHOR
علی اکبر
صفری سنجانی
safari_sinegani@yahoo.com
2
استاد، گروه علوم خاک، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان، ایران
AUTHOR
دوستمراد
ظفری
d_zafari@yahoo.com
3
دانشیار، گروه گیاهپزشکی،، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان، ایران
AUTHOR
اسماعیلزاده ص (1384) بررسی جمعیتهای میکوریزی پارک ملی تندوره خراسان و تأثیر عناصر کلسیم و پتاسیم بر میکوریزایی شدن درشرایط آزمایشگاهی. دانشگاه تریت مدرس. پایاننامه کارشناسی ارشد.
1
الیاسی یگانه م (1392) بررسی همزیستی قارچهای میکوریزی آربوسکولار در برخی از گیاهان دارویی و سبزیهای همدان. دانشگاه بوعلی سینا. پایاننامه کارشناسی ارشد.
2
جلالی ا و جعفری پ (1395) تأثیر محلولپاشی پتاسیم در کاهش اثرات مضر شوری در گیاه اسفناج. نشریه علوم باغبانی. 30(2): 201-208.
3
جهاندیده مهجن آبادی و و سپهری م (1393) اثر تلقیح قارچ Piriformos poraindica بر جذب و انتقال برخی عناصر در دو رقم گندم. مدیرت خاک و تولید پایدار. 4(3): 155-173.
4
حاجی نیا س، زارع م ج، محمدی گل تپه ا و رجالی ف (1390) بررسی سودمندی قارچ اندوفیت Piriformos poraindica و باکتری Azospir illum Sp. در افزایش تحمل گندم رقم سرداری به تنش شوری. تنشهای محیطی در علوم زراعی. 4(1): 21-31.
5
حبیبی س، فرزانه م و مسکرباشی م (1392) تأثیر قارچ مایکوریز بر رشد و جذب عناصر غذایی گندم در شرایط شور. تحقیقات آب و خاک ایران. 44(3): 311-320.
6
خراسانی نژاد س، سلطانلو ح، رمضانپور س، هادیان ج و آتشی ص (1394) اثر تنش خشکی روی برخی خصوصیات مورفولوژیکی کمیت و کیفیت اسانس در اسطوخودوس. بهزراعی کشاورزی. 17(4): 979-988.
7
رضوانی م، افشنگ ب، قلی زاده ع و زعفریان ف (1390) ارزیابی تأثیر قارچ مایکوریزا و منابع مختلف فسفر بر رشد و جذب فسفر در سویا. مدیریت خاک و تولید پایدار. 1(2): 97- 117.
8
زنگنه س (1391) بررسی وضعیت همزیستی مایکوریزایی چند گیاه غالب در بیابانهای استان سمنان. رستنیها. 3(1): 105- 108.
9
سادات ع، ثواقبی غ، رجالی ف، فرحبخش م، خاوازی ک و شیرمردی م (1389) تأثیر چند نوع قارچ مایکوریز آربوسکولار و باکتری محرک رشد بر شاخصهای رشد و عملکرد دو رقم گندم در یک خاک شور. نشریه آب و خاک. 24(1): 53-62.
10
سلیمانی ف، احمدوند گ و صفری سنجانی ع ا (1396) تأثیر کودهای شیمیایی، زیستی و آلی بر شاخصهای رشدی، عملکرد و اجزای عملکرد آفتابگردان تحت شرایط آبیاری کم و بهینه. دانش کشاورزی و تولید پایدار. 27(2): 19- 35.
11
نامور پ (1393) تأثیر قارچ Piriformos poraindica بر رشد و جذب نیتروژن در گیاهان ذرت. دانشگاه فردوسی مشهد. پایاننامه کارشناسی ارشد.
12
Akhani H (2006) Biodiversity of halophytic and sabkha ecosystems in Iran. In: Sabkha ecosystems Volume II: West and Central Asia, Ajmal Khan M (Ed.). Springer. pp. 71-88.
13
Arzanesh M H, Alikhani H A, Khavazi K, Rahimian HA and Miransari M (2011) Wheat (Triticum aestivum L.) growth enhancement by Azospirillum sp. under drought stress. World Journal of Microbiology and Biotechnology. 27: 197-205.
14
Assadi M (2001) Chenopodiaceae. Flora of Iran. 38: 260-261.
15
Augé Robert M (2001) Water relations, drought and vesicular-arbuscular mycorrhizal symbiosis. Mycorrhiza. 11: 3-42.
16
Barrow JR, Havstad KM, Hubstenberger J and McCaslin BD (1997b) Seed borne fungal endophytes on fourwing saltbush, Atriplex canescens. Arid Land Research and Management. 11: 307-314.
17
Barrow JR (2001) Carbon Transport by Symbiotic Fungi in Fourwing Saltbush, Atriplex canescens (Pursh) Nutt. In Wildland Shrub and Arid Land Restoration Symposium Proceedings. Pp: 1-4.
18
Barrow JR and Osuna P (2002) Phosphorus solubilization and uptake by dark septate fungi in fourwing saltbush, Atriplex canescens (Pursh) Nutt. Journal of Arid Environments. 51: 449-459.
19
Barrow JR, Lucero M, Osuna Avila P, Reyes Vera I and Aaltonen RE (2007) In: Fungal genomes that influence Basic Physiological Processesa of black grama and fourwing salt bush in arid south-western rangelands; Proceedings: Shrubland dynamics-fire and water; 2004 August 10–12; Lubbock, TX Proceedings RMRS-P-47. Fort Collins, CO; US Department of Agriculture, Forest Service, Rocky Mountain Research Station. p. 173.
20
Barrow J, and Aaltonen R (2001) Evaluation of the internal colonization of Atriplex canescens (Pursh) Nutt. roots by dark septate fungi and the influence of host physiological activity. Mycorrhiza. 11: 199-205.
21
Beis A and Patakas A (2012) Relative contribution of photoprotection and anti-oxidative mechanisms to differential drought adaptation ability in grapevines. Environmental and Experimental Botany. 78: 173-183.
22
Carroll GC and Carroll FE (1978) Studies on the incidence of coniferous needle endophytes in the Pacific Northwest. Canadian Journal of Botany. 56: 3034-3043.
23
Dougherty RC, Strain HH, Svec WA, Uphaus RA andKatz JJ (1966) Structure of chlorophyll c1. Journal of the American Chemical Society. 88: 5037-5038.
24
Ellis M (1976) More Dematiaceus hyphomycetes. Commowealth mycological Institute, Key (England)
25
Garcia E, Alonso A, Platas G and Sacristan S (2013) The endophytic mycobiota of Arabidopsis thaliana . Fungal Diversity. 60: 71- 89.
26
Ghanem G, Ewald A, Zerche S and Hennig F (2014) Effect of root colonization with Piriformospora indica and phosphate availability on the growth and reproductive biology of a Cyclamen persicum cultivar. Scientia Horticulturae. 172: 233-241.
27
Giri B, Kapoor R and Mukerji KG (2007) Improved tolerance of Acacia nilotica to salt stress by arbuscular mycorrhiza, Glomus fasciculatum may be partly related to elevated K/Na ratios in root andshoot tissues. Microbial Ecology. 54: 753-760.
28
Hammer EC, Nasr H, Pallon J, Olsson PA and Wallander H (2011) Elemental composition of Haselwandter K. and Read DJ. 1982. The significance of rootfungus association in two Carex species of high-alpine plant communities. Oecologia. 53: 352-354.
29
Haselwandter K and Read DJ (1982) The significance of rootfungus association in two Carex species of high-alpine plant communities. Oecologia. 53: 352-354.
30
Jumpponen A (2001) Dark septate endophytes-are they mycorrhizal?. Mycorrhiza. 11: 207-211.
31
Mandyam K and Jumpponen A (2005) Seeking the elusive function of the root-colonising dark septate endophytic fungi. Studies in Mycology. 53: 173-189.
32
Mardukhi B, Rejali F, Daei G, Ardakani MR, Malakouti MJ and Miransari M (2011) Arbuscular mycorrhizas enhance nutrient uptake in different wheat genotypes at high salinity levels under field and greenhouse conditions. Comptes Rendus Biologies. 334: 564-571.
33
Mathur N and Vyas A (2000) Influence of arbuscular mycorrhizae on biomass production, nutrient uptake and physiological changes in Ziziphus mauritiana Lam. under water stress. Journal of Arid Environments. 45: 191-195.
34
Mondale RK and Paul NK (2000) Effect of oil moisture on growth attributes root characters and yield of mustard (Brassica juncea L.). Pakistan Journal of Botany. 27: 143-150.
35
Newsham KK, Upson R and Read DJ (2009) Mycorrhizas and dark septate root endophytes in polar regions. Fungal Ecology. 2: 10-20.
36
Posada F, Catherine Aime M, Peterson SW, Rehner SA and Vega FE (2007) Inoculation of coffee plants with the fungal entomopathogen Beauveria bassiana (Ascomycota: Hypocreales). Mycological research. 3: 748-757.
37
Safari Sinegani AA and Elyasi Yeganeh M (2017) The occurrence of arbuscular mycorrhizal fungi in soil and root of medicinal plants in Bu-Ali Sina garden in Hamadan, Iran. Biological Journal of Microorganism. 5: 43-59.
38
Sengupta A and Chaudhuri S (2002) Arbuscular mycorrhizal relationships of mangrove plant community at theGanges river estuary in India. Mycorrhiza. 12: 169-174.
39
Sieber TN (2007) Endophytic fungi in forest trees: are they mutualists? Fungal Biology Reviews. 21: 75-89.
40
Sieber TN and Grünig CR (2006) Biodiversity of fungal root-endophyte communities and populations, in particular of the dark septate endophyte Phialocephala fortinii sl, Microbial root endophytes. Springer. pp. 107-13.
41
Smith SE and Read DJ (2008) Mycorrhizal Symbiosis. 3rd Ed. Academic Press, London, UK.
42
Swift RS, Sparks DL (1996) Methods of soil analysis: Part 3. Chemical methods. Soil Science Society of America Book Series. 5: 1018-1020.
43
Woudenberg JHC, Groenewald JZ, Binder M and Crous PW (2013) Alternaria redefined. Studies in Mycology. 75: 171-212.
44
ORIGINAL_ARTICLE
اثر نوع منبع نیتروژن و باکتریهای محرک رشد بر عملکرد و اجزای عملکرد توده بومی سیر تالش در رشت
این آزمایش بهمنظور ارزیابی اثر منابع نیتروژن و باکتریهای محرک رشد بر عملکرد و اجزای عملکرد توده بومی سیر تالش در سال زراعی 1396- 1395 بهصورت کرتهای خرد شده با طرح پایه بلوکهای کامل تصادفی و در سه تکرار انجام شد. تیمارها شامل منابع کود نیتروژن، 15 تن ورمیکمپوست، 100 کیلوگرم نیتروژن خالص در هکتار و تغذیه تلفیقی ورمیکمپوست (هفت و نیم تن) با نیتروژن (50 کیلوگرم خالص در هکتار) بهعنوان تیمار اصلی و باکتریها شامل عدم تلقیح باکتری (بهعنوان شاهد)، آزوسپریلیوم برازیلینس، آزوسپیریلیوم لیپوفروم، سودوموناس پوتیدا، سودوموناس فلورسنس، آزوتوباکتر، آزوسپریلیوم + سودوموناس، آزوسپریلیوم + آزوتوباکتر، سودوموناس + آزوتوباکتر، آزوسپریلیوم + سودوموناس + آزوتوباکتر بهعنوان تیمار فرعی بود. بالاترین عملکرد سوخ خشک در شرایط استفاده از 100 کیلوگرم نیتروژن خالص در هکتار از منبع کود شیمیایی اوره و کاربرد توام باکتریهای سودوموناس و آزوسپیریلیوم بهدست آمد. بین عملکرد سوخ و تمامی صفاتی نظیر عملکرد بیولوژیک، قطر سوخ، ارتفاع سوخ، تعداد سیرچه در هر سوخ، وزن سیرچه، وزن خشک سوخ، وزن خشک ساقه، تعداد برگ و ارتفاع بوته سیر بهجز تعداد لایه پوست سوخ همبستگی مثبت و معنیداری وجود داشت. همچنین، همبستگی بین اجزای عملکرد نظیر تعداد سیرچه در هر سوخ، وزن سیرچه، قطر و ارتفاع سوخ با صفات رویشی گیاه سیر مثبت و معنیدار بود. بهطور کلی، عملکرد و اجزای عملکرد سیر واکنشهای متفاوتی به منابع نیتروژن و باکتریهای محرک رشد گیاه نشان دادند. براساس نتایج این آزمایش، کابرد باکتری-های آزوسپیریلیوم + سودوموناس میتواند برای ارتقای عملکرد سوخ در کشاورزی متداول و تحت شرایط اقلیمی منطقه قابل توصیه باشد.
https://jci.ut.ac.ir/article_67073_9cd493e11495ca18e6f2f7446b8ee38e.pdf
2018-07-23
533
545
10.22059/jci.2018.242936.1842
اوره
تغذیه تلفیقی
صفات زراعی
کودهای زیستی
ورمیکمپوست
لیلا
علیزاد
shayesteh.alizad@gmail.com
1
دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه فیزیولوژی گیاهی، دانشگاه زنجان، زنجان، ایران
AUTHOR
معرفت
مصطفوی راد
mmostafavirad@gmail.com
2
استادیار، بخش تحقیقات علوم زراعی و باغی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی گیلان، سازمان تحقیقات و آموزش کشاورزی، رشت، ایران.
LEAD_AUTHOR
کیوان
آقائی
kayvanaghaei@zcu.ac.ir
3
استادیار گروه فیزیولوژی گیاهی، دانشگاه زنجان، زنجان، ایران.
AUTHOR
نصرتی ع ا (1379) اثرات روش کاشت، تراکم کاشت و اندازه سیرچه بر عملکرد سیر همدان. نهال و بذر. 3(20): 401- 404.
1
عطارزاده م، رحیمی ا و ترابی ب، دشتی ح (1394) تأثیر محلولپاشی نیترا ت کلسیم، پتاسیم دیهیدروژن فسفات و سولفات منگنز بر تجمع یونی و ویژگیهای فیزیولوژیک گلرنگ در شرایط تنش شوری. 107: 133- 142.
2
Akhtar M and Malik A (2000) Rolse of organic soil amendments and soil organisms in the biological control of plant parasitic nematodes: A review. Bioresource Technology. 74: 35-47.
3
Bagali AN, Patil HB, Chimmed VP, Patil PL and Patil RV (2012) Effect of inorganic and organic fertilizers on growth and yield of onion (Allium cepa L.). Karnataka Journal of Agricultural Sciences. 25(1): 112-115.
4
Dauda SN, Ajayi1 FA and Ndor E (2008) Growth and yield of watermelon (Citrullus lanatus) as affected by poultry manure application. Journal of Agriculture and Social Sciences. 4(3): 121-124.
5
Diriba-Shiferaw G, Nigussie-Dechassa R, Kebede-Woldetsadik GT and Sharma JJ (2013) Growth and nutrients content and uptake of garlic (Allium sativum L.) as influenced by different types of fertilizers and soils. African Journal of Agricultural Research. 8(43): 5387-5398.
6
Diriba-Shiferaw G, Nigussie-Dechassa R, Kebede-Woldetsadik, GT and Sharma JJ (2014) Bulb quality of garlic (Allium sativum L.) as influenced by the application of inorganic fertilizers. Academic Journal. 9(8): 778-790.
7
Fatma A, Rizk AM, Shaheen EH, AbdEl-Samad T and El-Lobban T (2014) Response of onion plants to organic fertilizer and foliar spraying of some micro-nutrients under sandy soil conditions. Journal of Applied Science Research. 22: 235-242.
8
Gaiki UR, Jogdande ND, Dalal SR, Nandre DR and Ghawade SM (2006) Effect of bio-fertilizer under reduced doses of inorganic fertilizers on growth and yield of garlic. Plant-Arch Journal. 6(10: 367-368.
9
Ghanati S and Sharangi AB (2009) Effect of bio-fertilizers on growth, yield and quality of onion. Journal of Crop and Weed. 5(1):120-123.
10
Gholami A, Shahsavani S and Nezarat S (2009) The effect of plant growth promoting rhizobacteria on germination, seedling growth and yield of maize. World AcademyofScience, EngineeringandTechnology. 49: 19-24.
11
Gowda MC, Vijayakumar M and Gowda APM (2007) Influence of integrated nutrient management on growth, yield and quality of garlic (Allium sativum L.). CropResearchHisar. 33: 144-147.
12
Hammeeda B, Rupela OP, Reddy G and Satyavani K (2006) Application of plant growth promoting rhizhobateria associated with composts and macro fauna for growth promotion of Pearl Millet (Pennisetum glaucum L.). Biology and Fertility of Soils. 43(2): 221-227.
13
Khan AA, Jilani G and Akhtar MS (2009) Phosphoruse solublising bacteria: occurance, mechanisms and their role in crop production. Journal of Agriculture and Biological Sciences. 1: 48-58.
14
Migahed HA, Ahmed AE and Abd El-Ghany BF (2004) Effect of different bacterial strains as biofertilizer agents on growth, production and oil of (Apium graveolense) under Calcareous soil. Journal of Agriultural Science. 12: 511-525.
15
Mehnaz S, Kowalik T, Reynolds B and Lazarovits G (2010) Growth promoting effects of corn (Zea mays L.) bacterial isolates under greenhouse and field conditions. Soil Biology & Biochemistry. 42: 1848.1856.
16
Mishra P and Dash D (2014) Rejuvenation of biofertilizer for sustainable agriculture and economic development. Journal ofSustainable Development. 11(1): 41-61.
17
Naeem M, Lqbal J and Bakhsh MAA (2006) Comparative study of inorganic fertilizers and organic manures on yield and yield components of mungbean (Vigna radiat L.). Journal of Agricultural Society. 2: 227-229.
18
Narula N, Kumar V, Behl RK, Deubel A, Gransee A and Merbach BW (2000) Effect of P-solubilizing Azotobacter chroococcum on N, P and K uptake in P-responsive wheat genotypes grown under greenhouse conditions. Journal of Plant Nutrition. 163: 393-398.
19
Raghawanshi R (2012) Opportunities and challenges to sustainable agriculture in India. NEBIO Journal. 3(2): 78-86.
20
Reddy KC, Reddy KM (2005) Differential levels of vermicompost and nitrogen on growth and yield in onion (Allium cepa L.) - radish (Raphanus sativus L.) cropping system. Journal of Research ANGRAU. 33(1): 11-17.
21
Singh SP (2012) Response of bio-fetilizer Azospirilum on growth and yield of fennel. Asian Journal of Horticulture. 7(2): 561-564.
22
Surindra S (2009) Impact of vermicompost and composted farmyard manure on growth and yield of garlic (Allium Stivum L.) field crop. International Journal of Plant Production. 3(1): 27-38.
23
Zeidan MS (2007) Effect of organic manure and phosphorus fertilizers on growth, yield and quality of lentil grown in sandy soil. Research Journal of Agriculture and Biological Sciences. 3(6): 748: 752.
24
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی تأثیر سطوح کم آبیاری بر عملکرد و اجزای عملکرد ژنوتیپهای گلرنگ
بهمنظور بررسی تنش کم آبی بر عملکرد دانه و اجزای عملکرد ژنوتیپهای گلرنگ، آزمایشی به صورت کرتهای خرد شده در قالب طرح پایه بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار در مزرعه تحقیقاتی دانشکده کشاورزی دانشگاه شهرکرد، در بهار سال 1395 انجام شد. در این پژوهش، تیمارها شامل سه سطح آبیاری براساس 100، 75 و 50 درصد نیاز آبی گیاه و ژنوتیپهای گلرنگ شامل سینا، محلی اصفهان و فرامان بودند. نتایج نشان داد تنش کم آبی موجب کاهش معنیدار تعداد شاخههای جانبی در هر بوته، ارتفاع بوته، تعداد غوزه در بوته، تعداد دانه در غوزه، وزن هزاردانه، عملکرد دانه، درصد روغن، عملکرد روغن، زیست توده و شاخص برداشت شد. کمترین عملکرد دانه (1196 کیلوگرم در هکتار) و عملکرد روغن (313 کیلوگرم در هکتار) از تیمار تنش کم آبی50 درصد و بیشترین عملکرد دانه (2310 کیلوگرم در هکتار) و عملکرد روغن (659 کیلوگرم در هکتار) از تیمار 100 درصد نیاز آبی بهدست آمد. همچنین نتایج نشان داد در بین ژنوتیپهای گلرنگ از نظر صفات مورد مطالعه تفاوت معنیداری وجود داشت بهطوری که بیشترین عملکرد دانه (1998 کیلوگرم در هکتار) و عملکرد روغن (561 کیلوگرم در هکتار) در ژنوتیپ سینا و کمترین عملکرد دانه (1659 کیلوگرم در هکتار) و عملکرد روغن (426 کیلوگرم در هکتار) در ژنوتیپ محلی اصفهان مشاهده شد. نتایج نشان داد تفاوتهای موجود در بین ژنوتیپها از نظر صفات مورفولوژیک، درصد روغن و عملکرد روغن از مولفههای مهم بوده که میتواند در انتخاب ژنوتیپها و یا ارقام مناسب تحت شرایط خشکی از آن استفاده کرد.
https://jci.ut.ac.ir/article_67072_0578803a447193f6698262723afe6cd8.pdf
2018-07-23
547
561
10.22059/jci.2018.242020.1835
درصد روغن
زیست توده
شاخص برداشت
عملکرد روغن
وزن هزار دانه
فاطمه
محتشمی
fatememohtashami44@yahoo.com
1
دانشجوی دکتری، گروه زراعت، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران.
AUTHOR
محمود رضا
تدین
mrtadayon@yahoo.com
2
دانشیار، گروه زراعت، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران
LEAD_AUTHOR
پرتو
روشندل
roshandelparto@gmail.com
3
استادیار، گروه زراعت، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران
AUTHOR
باغخانی ف و فرحبخش ح (1387) اثرات تنش خشکی بر عملکرد و برخی صفات فیزیولوژیکی سه رقم گلرنگ بهاره. پژوهش کشاورزی: آب، خاک و گیاه در کشاورزی. 8(2): 45-57.
1
بختوری ص ب، پاسبان اسلام ب، قربی چلکی س و محمدی ح (1394) اثر پرایمینگ و تنش کمآبی بر رشد، عملکرد و اجزای عملکرد گلرنگ. پژوهشنامه گیاهان دانه روغنی ایران. 4(2): 59-74.
2
بهدانی م و جامی الاحمدی م (1389) عکسالعمل ارقام بهاره گلرنگ (Carthamus tinctorius L.) به فواصل مختلف آبیاری در شرایط بیرجند. پژوهشهای زراعی ایران. 8(2): 315-323.
3
پاسبان اسلام ب (1390) تأثیر تنش خشکی بر عملکرد دانه و روغن ژنوتیپهای پاییزه گلرنگ. مجله علوم گیاهان زراعی ایران. 42(2): 275-283.
4
پالیزدار م، دلخوش ب، شمیرانیراد ا و نور محمدی ق (1391) بررسی اثر رژیمهای آبیاری و مقادیر پتاسیم بر عملکرد و اجزای عملکرد گلرنگ (Carthamus tinctorius L.). تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران. 28(4): 628-645.
5
پورداد س وجمشید مقدم م (1392) بررسی تنوع ژنتیکی در کلکسیون گلرنگ (Carthamus tinctorius) در شرایط دیم کشور. مجله زراعت دیم ایران. 1(3): 1-16.
6
پهلوی م ه، سعیدی ق و میرلوحی آ ف (1397) پاسخ به گزینش غیرمستقیم برای عملکرد و میزان روغن دانه در گلرنگ. مجله تولید گیاهان زراعی. 1(3): 49-639.
7
خلیلی م، تقوی م و پور ابوقداره ع (1392) ارزیابی عملکرد دانه و برخی از صفات زراعی و مورفولوژیک در ژنوتیپهای بهاره گلرنگ (Carthamus tinctorius L.) در شرایط آبیاری و دیم. اصلاح گیاهان زراعی. 16: 139-148.
8
شیراوند ر و مجیدی م م (1392) مقایسه گونههای وحشی و اهلی گلرنگ (Carthamus tinctorius L.) از نظر تحمل به تنش خشکی و تنوع صفات مرفولوژیک و زراعی. پژوهشهای زراعی ایران. 12(4): 738-750.
9
فتحیان ش، احسانزاده پ (1391) ارتباط برخی خصوصیات فیزیولوژیک با عملکرد در گلرنگ بهاره در دو رژیم آبیاری. مجله علوم گیاهان زراعی ایران. 43(4): 649-659.
10
فراست م، ساجدی ن و میرزاخانی م (1387) واکنش صفات گیاهی چهار ژنوتیپ گلرنگ در شرایط تنش کمبود آب. یافتههای نوین کشاورزی. 3(1): 67-81.
11
فرجام س، رخزادی ا، محمدی ه و سمکو ق ش (1392) اثر تنش قطع آبیاری و محلولپاشی اسید سالیسیلیک بر رشد، عملکرد و اجزای عملکرد سه رقم گلرنگ بهاره. فصلنامه علمی پژوهشی فیزیولوژی گیاهان زراعی. 6(23): 99-112.
12
فرخینیا م، رشدی م، پاسبان اسلام ب و ساسان دوست ر (1390) بررسی برخی از ویژگیهای فیزیولوژیک و عملکرد گلرنگ بهاره تحت تنش کمبود آب. مجله علوم گیاهان زراعی ایران. 42(3): 545-545.
13
فرشی ع، سیادت ح، دربندی ص، انتصاری م ر، خیرابی ج، میرلطفی م، سلامت ع و سادات میرئی م ح (1382) مدیریت آب آبیاری در مزرعه. چاپ اول. انتشارات کمیته ملی آبیاری و زهکشی ایران. 200 ص.
14
فنایی ح ر، کیخا ه و پیری ع (1394) اثر پرایمینگ بذر بر عملکرد دانه و روغن گلرنگ تحت شرایط کمآبیاری. علوم و تحقیقات بذر ایران. 2(2): 49-59.
15
کافی م و رستمی م (1386) اثر تنش خشکی در مرحله رشد زایشی بر عملکرد، اجزای عملکرد و درصد روغن سه رقم گلرنگ (Carthamus tinctorius L.) در شرایط آبیاری با آب شور. پژوهشهای زراعی ایران. 5(1): 121-131.
16
میلادی لاری ا، احسانزاده پ (1389) تأثیر منفی تنش خشکی بر عملکرد گلرنگ از طریق کاهش سطح فتوسنتزکننده و کارایی کوانتومی فتوسیستم II. علوم گیاهان زراعی ایران. 41(2):375-382.
17
یاری پ، کشتکار ا م و سپهری ع (1393) بررسی تأثیر تنش رطوبتی بر رشد و عملکرد گلرنگ بهاره. فناوری و تولیدات گیاهی. 14(2): 101-117.
18
Amini H, Arzani A and Bahrami F (2013) Seed yield and some physiological traits of safflower as affected by water deficit stress. International Journal of Plant Production. 7 (3): 598-614.
19
Asghari B and Gharibi asl S (2016) The oil and protein content of Isfahan’s safflower in different periods of irrigation, levels of humic acid and superabsorbent. International Journal of Life Science and Pharma Research. 1: 56-63.
20
Ashrafi E and Razmjoo Kh (2010) Effect of Irrigation Regimes on Oil Content and interspecific variation and environmental control. New Phytologist. 193: 30-50.
21
Asqarpanh J and Kazemivash N (2013) Pharmacology and medicinal properties of (Carthamus tinctorius L). Chines Journal of integrative Medicine. 19(2): 59-53.
22
Beyyavas V, Haliloglus H, Copur O and Yilmaz A (2011) Determination of seed yield and yield components of some safflower (Carthamus tinctorius L.) cultivar s; lines and populations under the semi-arid Conditions. South African Journal of Biotechnology. 10: 527-534.
23
Isanbullouglu A, Gocmen E, Gezer E, Pasa C and Konukcu F (2009) Effect of water stress at different development stages on yield and water productivity of winter and summer safflower (Carthamus tinctorius L.). Agricultural Water Management. 96: 1429-1434.
24
Ma Q, Niknam SR and Turner DW (2000) Respenses of osmotic adjustment and seed yield of Brassica napus and B.juncea to soil water deficit at different growth stages. Australian Journal of Agricultural Research. 57(2): 221-226.
25
Poorter H, Niklas K, Reich PB, Oleksyn J, Poot P and Mommer L (2012) Biomass allocation to leaves, stems and roots: meta-analyses of interspecific variation and environmental control. New Phytologist. 193: 30-5030.
26
Yau SK (2006) Winter versus spring sowing of rain–fed safflower in a semi- arid, high- elevation Mediterranean environment. European Journal of Agronomy. 10: 1-8.
27
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی خلاء عملکرد ناشی از علفهای هرز و عوامل مدیریتی بر عملکرد سویا در شهرستان کلاله
بهمنظور بررسی عوامل مؤثر در کاهش عملکرد سویا، نسبت به عملکرد قابل حصول، آزمایشی به صورت پیمایشی با استفاده از 50 مزرعه سویا در شهرستان کلاله در تابستان سال 1394 انجام گردید. نمونهبرداری از علفهای هرز در اوایل فصل رشد سویا بر اساس الگوی دبلیو انجام شد. در این پژوهش کلیه اطلاعات مربوط به مدیریت زراعی شامل مساحت اراضی، عملیات تهیه بستر بذر، تاریخ کاشت، روش کاشت، رقم مورد استفاده، محل تهیه بذر، میزان بذر مصرفی، روش مبارزه با علف هرز، نوع، مقدار و زمان مصرف علفکش، در قالب پرسشنامه و در طول فصل رشد از طریق پرسش از کشاورزان جمعآوری و تکمیل شد. در پایان فصل رشد میزان عملکرد ثبت گردید. از میان پارامترهای مختلف مورد بررسی مساحت مزرعه، مقدار بذر مصرفی، استفاده از بذر گواهیشده، تاریخ کاشت، علف هرز کنجدشیطانی و علف هرز قیاق تأثیر معنیداری بر عملکرد سویا داشتند. نتایج نشان داد بین حداقل عملکرد تخمین زده شده با مدل (1039 کیلوگرم در هکتار) و عملکرد مطلوب (2036 کیلوگرم در هکتار)، 996 کیلوگرم در هکتار خلأ وجود دارد. سهم عدم استفاده از بذرهای گواهی شده در ایجاد این میزان خلأ عملکرد 07/23 درصد، تاریخ کاشت دیرهنگام 04/15 درصد، مقدار مصرف کم بذر 54/11 درصد، مساحت کم مزارع 62/7 درصد، حضور علفهرز قیاق و کنجد شیطانی به ترتیب 47/12 و 25/30 درصد بود. بنابراین با بهینهسازی موارد ذکرشده میتوان خلأ عملکرد را کاهش داد و عملکرد را به دو برابر افزایش داد.
https://jci.ut.ac.ir/article_67169_4934aba5bfb514cc13680405f521d8e7.pdf
2018-07-23
563
576
10.22059/jci.2018.243997.1852
آنالیز خط مرزی
استان گلستان
پتانسیل عملکرد
رگرسیون گام به گام
کنجد شیطانی
آسیه
سیاهمرگویی
siahmargue@yahoo.com
1
استادیار، گروه زراعت، دانشکده تولید گیاهی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران.
LEAD_AUTHOR
بنیامین
ترابی
ben_torabi@yahoo.com
2
دانشیار، گروه زراعت، دانشکده تولید گیاهی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران.
AUTHOR
عیدمحمد
سهرابی راد
sohrabiraad@yahoo.com
3
دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه زراعت، دانشکده تولید گیاهی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران.
AUTHOR
سید مجید
عالیمقام
m_alimagham@yahoo.com
4
دانشجوی دکتری، گروه زراعت، دانشکده تولید گیاهی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
ابطالی ی، باغستانی م ع، زند ا و ابطالی م (1386) علفهای هرز و مدیریت آنها در سویا. گزارش نهایی طرح تحقیقاتی، موسسه تحقیقات گیاهپزشکی کشور (بخش تحقیقات علف های هرز). 56 صفحه.
1
احمدی ک، قلیزاده ح ا، عبادزاده ح ر، حسینپور ر، حاتمی ف، فضلی ب، کاظمیان آ و رفیعی م (1393) آمارنامه کشاورزی. 170 صفحه.
2
اکبری ا و زارع مهرجردی م ر (1380) اثر نهاده های جدید (بذر اصلاحشده) بر میزان تولید گندم. اقتصاد کشاورزی و توسعه. 36(9): 137-150.
3
امامی کنگر د، سیاهمرگویی آ، کامکار ب و بصیری م (1396) بررسی کاهش عملکرد سویا در تداخل با علف هرز کنجد شیطانی (Cleome viscosa L). مجموعه مقالات هفتمین همایش علوم علفهای هرز ایران. گرگان. 1-4.
4
ترابی ب، سلطانی ا، گالشی س و زینلی ا (1390) تحلیل عوامل محدودکننده عملکرد گندم در شرایط گرگان. نشریه تولید گیاهان زراعی. 4(4): 1-17.
5
جانعلینژاد م، کاظمی ح، یونسآبادی م و نیازمرادی م (1394) تهیه نقشه پراکنش و فلور علفهایهرز تابستانه باغات مرکبات در شهرستان بندر گز با استفاده از سامانه اطلاعات جغرافیایی. نشریه پژوهشهای تولید گیاهی. 22 (3): 181-201.
6
جلال کمالی م ر، اسدی ه و نجفی میرک ت (1386) برنامه راهبردی تحقیقات گندم آبی و دیم کشور. وزارت جهاد کشاورزی. 171 صفحه.
7
حجارپور ا، سلطانی ا و ترابی ب (1394) استفاده از آنالیز خط مرزی در مطالعات خلأ عملکرد: مطالعه موردی گندم در گرگان. نشریه تولید گیاهان زراعی. 8(4): 183-201.
8
زینلی ا، اکرم قادری ف، سلطانی ا و کشیری ح ا (1382) تأثیر تاریخ کاشت بر عملکرد و اجزای عملکرد دانه سه رقم سویا در گرگان. پژوهشهای زراعی ایران. 1(1): 81-92.
9
سلطانی ا (1394) کاربرد نرمافزار SAS در تجزیههای آماری (برای رشتههای کشاورزی). انتشارات جهاد دانشگاهی مشهد. 184 صفحه.
10
سلیمی ح و حمیدی آ (1391) اثر بوجاری بذر بر آلودگی مزارع گندم به علفهای هرز. نشریه علوم و فناوری بذر ایران. 1(1): 73-83.
11
شفیق م، راشد محصل م ح و نصیری محلاتی م (1385) بررسی اثر گاوپنبه بر عملکرد و اجزای عملکرد سویا در تراکمهای مختلف گیاهی و تاریخهای مختلف کاشت. مجله پژوهشهای زراعی ایران، 4(1): 71-81.
12
فراهانی پاد پ، پاک نژاد ف، فاضلی ف، ایلکایی م ن و داوودی فرد م (1391) اثر تاریخ کاشت بر ماده خشک و اجزای عملکرد چهار رقم سویا رشد نامحدود. مجله زارعت و اصلاح نباتات. 8(1):203-212.
13
فرهنگآسا ک، سیادت ع ا و قدرتی غ ر (1389) بررسی اثر تاریخهای مختلف کاشت بر عملکرد و اجزای عملکرد دانه ارقام زودرس سویا در شرایط دزفول. فیزیولوژی گیاهان زراعی. 2(1): 111-127.
14
فشی م و ندرلو ل (1393) بررسی تاثیر عوامل مختلف زراعی و ساختاری بر میزان عملکرد محصول گندم آبی در شهرستان کنگاور. دومین همایش ملی پژوهشهای کاربردی در علوم کشاورزی. 1-6.
15
کامکار ب، کوچکی ع ر، نصیری محلاتی م و رضوانی مقدم پ (1386) آنالیز خلأ عملکرد زیره سبز در 9 منطقه از استانهای خراسان شمالی، خراسان رضوی و خراسان جنوبی با استفاده از رهیافت مدلسازی. پژوهشهای زراعی ایران. 5(2): 333-341.
16
منتظری م (1386) تأثیر یولاف وحشی (Avena ludviciana)، خردل وحشی (Sinapis arvensis) و فالاریس (Phalaris minor) با تراکمهای گوناگون روی عملکرد و اجزای عملکرد گندم. پژوهش و سازندگی در زراعت و باغبانی. 74: 72-78.
17
نکاحی م ز، سلطانی ا، سیاهمرگویی آ و باقرانی ن (1393 الف) بررسی عوامل مؤثر بر تراکم جمعیت علفهای هرز و کاهش عملکرد ناشی از آنها در گندم: مطالعه موردی استان گلستان- روستای سرمحله بندر گز. بوم شناسی کشاورزی. 6(2): 393-405.
18
نکاحی م ز، سلطانی ا، سیاهمرگویی آ و باقرانی ن (1393 ب) خلأ عملکرد مرتبط با مدیریت زراعی در گندم (مطالعه موردی: استان گلستان- بندرگز). تولید گیاهان زراعی. 7(2): 135-156.
19
Bhatia VS, Singh P, Wani SP, Chauhan GS, Rao AVR, Mishra AK and Srinivas K (2008) Analysis of potential yields and yield gaps of rain fed soybean in India using CROPGRO-Soybean model. Agricultural and Forest Meteorology. 148: 1252-1265.
20
Fischer G, Van Velthuizen H and Nachtergaele F (2000) Global Agro-ecological Zones Assessment: Methodology and Results. Interim Report IR-00-064. IIASA, Vienna and FAO, Rome.
21
Oh YJ, Kim KH, Cho SK, Kim TS, Kim JG, Wood AJ and Cheo Y (2009) Selectable traits for yield improvement in double crop soybeans at high plant density with late plant density with late planting. World Journal of Agriculture Science. 5(3): 301-307.
22
Rajapakse DC (2003) Biophysical factors defining rice yield gaps. International Institute for Geo-Information Science and Earth Observation Enscheda (ITC). The Netherlands. 80p.
23
Schaap D (2010) Double Crop Beans after Wheat. Ontario Agriculture Tanaka, Y.u. and Shiraiwa, T. 2009. Stem growth habit affects leaf morphology and gas exchange traits in soybean. Annals Botanic. 104 (7): 1293-1299.
24
Sentelhas PC, Battisti R, Camara GMS, Farias JRB, Hampf AC and Nendel C (2015) The soybean yield gap in Brazil-magnitude, causes and possible solutions for sustainable production. Journal of Agricultural Science. 153 (8):1394-1411.
25
Singh P, Vijaya D, Chinh NT, Pongkanjana A, Prasad KS, Srinivas K and Wani SP (2001) Potential productivity and yield gap of selected crops in the rainfed regions of India, Thailand, and Vietnam. Natural Resource Management Program Report no. 5. Patancheru 502 324, Andhra Pradesh, India: International Crops Research Institute for the Semi- Arid Tropics. 50 pp.
26